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文章信息
- 杨涛, 赵疆, 魏亚琴, 方彦昊, 王治业, 李鑫, 杨晖
- YANG Tao, ZHAO Jiang, WEI Yaqin, FANG Yanhao, WANG Zhiye, LI Xin, YANG Hui
- 华重楼内生真菌聚多曲霉的促生与拮抗作用
- Growth promoting and antagonistic effects of endophytic fungus Aspergillus sydowii from Paris polyphylla var. chinensis
- 微生物学通报, 2021, 48(8): 2665-2680
- Microbiology China, 2021, 48(8): 2665-2680
- DOI: 10.13344/j.microbiol.china.201111
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文章历史
- 收稿日期: 2020-11-26
- 接受日期: 2021-02-07
- 网络首发日期: 2021-03-19
2. 甘肃省微生物资源开发利用重点实验室 甘肃 兰州 730000;
3. 特色微生物与植物资源创新甘肃省国际科技合作基地 甘肃 兰州 730000
2. Key Laboratory of Microbial Resources Exploitation and Application, Lanzhou, Gansu 730000, China;
3. International Scientific and Technological Cooperation Base for Characteristic Microorganism and Plant Resource of Gansu Province, Lanzhou, Gansu 730000, China
重楼是百合科(Liliaceae)重楼属(Paris L.)植物,已被收录入《国家重点保护野生植物名录》。2015版《中华人民共和国药典》仅收载滇重楼(Paris polyphylla var. yunnanensis)和七叶一枝花(Paris polyphylla)为药材重楼的基源植物[1]。华重楼是其变种,主要分布在湖北、湖南、江西、贵州、浙江等长江中下游地区[2],而另外一种变种狭叶重楼(Paris polyphylla var. stenophylla)主要分布在甘肃、陕西一带[3]。重楼以干燥根茎入药,具有清热解毒、消肿止痛、抗癌[4-5]等功效。近年来华重楼需求量逐年增加,加之主产区乱采滥挖,野生种质资源遭到严重破坏。生态种植是保护华重楼资源、满足相关产业可持续发展的首选途径之一[6],相较于中药材“Good Agricultural Practices (GAP)”种植,其更加强调过程管理和投入品的使用,禁止化学合成的肥料、农药的使用,鼓励植物源、微生物源等环境友好的生物产品的使用是其基本要求。
重楼生长缓慢,对环境要求苛刻,喜温暖湿润,怕强光直射[7],过度光照会抑制光合作用而导致氧化损伤[8]。此外,根腐病也普遍发生,是危及重楼生长的主要病害之一[9]。关于重楼内生菌已有研究报道,耿红等[10]探究了滇重楼根的内生细菌多样性,分离到的内生细菌归属4个门5个纲7个目11个科,通过与小麦幼苗的共培养,筛选获得10株具有促进生长作用的菌株。王艳等[11]应用Illumina MiSeq PE250高通量测序技术对重楼根际土壤、根及根茎内生真菌进行多样性测定,结果表明根茎内生菌主要分布于51个属,其中相对百分含量前5的有Roseodiscus (占比83.30%)、Cadophora (占比2.89%)、枝孢属(占比2.15%)、Oliveonia (占比1.40%)、曲霉属(占比0.82%)。王茜等[12]从滇重楼根、块茎、叶中分离内生真菌,基于rDNA ITS序列分析和形态学方法进行分类鉴定,结果表明镰刀菌属(Fusarium)分离率最高(0.87),优势度为11.62%;曲霉属(Aspergillus)分离率较高(0.16),优势度为2.14%。综上所述,重楼内生真菌的分离鉴定及多样性研究较多,功能研究报道较少。曲霉属是重楼内生真菌优势属之一,易于分离培养,本研究拟从甘肃分布的华重楼中分离内生真菌,研究曲霉属益生真菌功能,及其对华重楼幼苗生理生化、内源激素水平的影响,以期为促生、抗病益生菌及专用肥的开发提供参考。
1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 试验所用药材及菌种华重楼采自甘肃省平凉市华亭县关山,海拔2 500 m,由甘肃省科学院生物研究所杨晖研究员根据中国植物志[3]第15卷第92页对华重楼的形态学描述鉴定为华重楼。华重楼2年生种苗自繁于兰州市和平镇生物苑基地,海拔1 800 m。
根腐病病原真菌尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum)分离自根腐病药用植物华重楼,保藏于中国工业微生物菌种保藏中心甘肃分中心,保藏号为GSICC 60612;腐烂病病原细菌胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种(Pectobacterium carotovorum subsp. carotovorum,Pcc ATCC 15713)购自美国模式培养物集存库(American Type Culture Collection,ATCC)。
1.1.2 主要试剂和仪器及培养基丙二醛测定试剂盒(分光光度法)、叶绿素测定试剂盒(分光光度法),苏州科铭生物技术有限公司。Biolog微生物鉴定仪,珠海美华医疗科技有限公司。
马丁培养基(g/L):蛋白胨5.00,磷酸氢二钾1.00,硫酸镁0.50,酵母浸出粉2.00,葡萄糖20.00,用于真菌的生长培养。阿须贝培养基(g/L):磷酸二氢钾0.20,硫酸镁0.20,氯化钠0.20,碳酸钙5.00,甘露醇10.00,硫酸钙0.10,琼脂15.00,加入0.5%的刚果红5 mL/L,灭菌后制成平板备用,用于固氮菌活性筛选。NBRIP无机磷固体培养基(g/L):葡萄糖10.00,磷酸钙5.00,氯化镁5.00,硫酸镁0.20,氯化钾0.20,硫酸铵1.00,琼脂15.00,用于真菌解磷能力的定性测定。虎红固体培养基(g/L):蛋白胨5.00,葡萄糖10.00,磷酸二氢钾1.00,硫酸镁(无水) 0.50,琼脂20.00,孟加拉红0.03,用于真菌的分离培养。
1.2 方法 1.2.1 聚多曲霉的分离鉴定将采收的华重楼种子用自来水流水冲洗10 min,用滤纸吸干表面水分,75%的乙醇浸泡30 s,无菌水冲洗2-3遍,再用0.2%的升汞浸泡10 min,无菌水冲洗3-4遍[13],以最后冲洗的无菌水100 μL涂布于虎红固体培养基作为对照。将表面消毒处理后的华重楼种子用灭菌刀片切为小瓣,放置于200 ℃高温干热灭菌处理过的研钵中,加入10 mL灭过菌的生理盐水,充分研磨,吸取上述液体100 μL涂布于虎红固体培养基,重复3次,28 ℃黑暗培养,10 d左右长出不同的真菌。挑少许菌丝到PDA平板上反复纯化4-6代,4 ℃低温保存菌种。
采用Biolog微生物鉴定仪进行生理生化鉴定,将分离内生菌的孢子悬液接种到含有多种碳、氮源及微量成分的微生物鉴定板中,以第一个孔为空白对照,28 ℃培养48 h,750 nm处测吸光值。
采用SDS法提取菌株的DNA[14],用引物ITS1 (5′-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3′)和ITS4 (5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′) PCR扩增菌株rDNA ITS序列。PCR反应体系(25 μL):10×PCR缓冲液2.5 μL,dNTPs (2.5 mmol/L) 1.5 μL,引物ITS 1/4 (10 μmol/L)各1.5 μL,Taq DNA聚合酶(5 U/μL) 1 μL,模板1 μL,ddH2O 16 μL。PCR反应条件:95 ℃ 5 min;92 ℃ 1 min,50 ℃ 1 min,72 ℃ 2 min,40个循环;72 ℃ 10 min。PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测后,送北京擎科新业生物技术有限公司测序。测序结果提交NCBI数据库BLAST比对,MEGA 7.0构建进化树。
1.2.2 内生菌对玉米种子发芽的影响试验根据文献[15-16]方法,选择分离出的具有促生、抗病作用的菌聚多曲霉、哈慈木霉(Trichoderma harzianum)进行玉米种子发芽试验。蘸取少量聚多曲霉、哈茨木霉菌体接种到20 mL马丁培养基中,28 ℃、180 r/min振荡培养3 d,将培养好的菌液分别稀释50倍和500倍,分别吸取10 mL加入90 mm×15 mm平皿中,对照为吸取相同体积的无菌水加入平皿中,每个平皿放入100粒玉米种子,每处理重复3次,25 ℃避光培养48 h。计算种子发芽指数(Germination Index,GI)的公式[17]:GI (%)=(A1×A2)/(B1×B2)×100
式中,A1:处理后的种子发芽率(%);A2:处理后的平均根长(mm);B1:对照种子发芽率(%);B2:对照平均根长(mm)。
1.2.3 聚多曲霉的功能分析固氮活性定性检测:从分离的聚多曲霉jdqmzz-1菌落边缘挑取少量菌丝接种于阿须贝培养基中,28 ℃黑暗培养7 d,观察菌落生长情况。
解磷能力定性检测:将聚多曲霉jdqmzz-1接种于NBRIP无机磷固体培养基上,置于28 ℃培养箱中培养2-5 d,观察有无解磷圈及解磷圈大小,根据解磷圈与菌落比值大小确定其对无机磷的解磷作用。
拮抗性检测:选取根腐病病原菌尖孢镰刀菌(GSICC 60612)与聚多曲霉jdqmzz-1进行平板拮抗试验。将尖孢镰刀菌接种在PDA培养基的正中央,十字对称20 mm处接种聚多曲霉,于30 ℃恒温箱中进行培养。观察菌落生长和抑菌圈状况,计算拮抗指数的公式[18]:拮抗指数=(抑菌圈半径-拮抗菌半径)/拮抗菌半径。式中,抑菌圈半径为拮抗菌菌落中心至病原菌菌丝边缘的距离。检测聚多曲霉jdqmzz-1菌液对腐烂病病原细菌胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种(ATCC 15713)的抑菌效果。蘸取少量聚多曲霉菌体接种到20 mL马丁培养基中,28 ℃、180 r/min振荡培养3 d,将胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种(ATCC 15713)菌液均匀涂布于马丁培养基平板,用无菌滤纸片蘸取聚多曲霉jdqmzz-1菌液并置于马丁平板上,置于28 ℃培养箱中培养2-5 d。
1.2.4 聚多曲霉菌液的LC-MS代谢组检测蘸取少量聚多曲霉jdqmzz-1菌体接种到50 mL马丁培养基中,28 ℃、180 r/min振荡培养3 d,将培养的菌液5 000 r/min离心10 min,取上清液送南京集思慧远生物科技有限公司测定LC-MS代谢组学,检索文献查找相关化合物的功能或潜在功能。
代谢组分析过程如下:(1) 代谢物提取:取5 mL样本于10 mL离心管中,放入冻干机中冻干12 h;向冻干后的样本加入800 μL的80%甲醇,涡旋1 min;4 ℃超声30 min,于-20 ℃静置1 h,于4 ℃、12 000 r/min离心15 min;取200 μL上清,加入5 μL内标(二氯苯丙氨酸2.8 mg/mL),转入进样小瓶中待LC-MS检测分析。(2) 上机检测。(3) 数据处理。
1.2.5 聚多曲霉对华重楼生长的影响华重楼幼苗叶片内源激素含量检测:以温室无土基质栽培的2年生华重楼种苗为研究对象,采用完全随机试验设计,重复3次;以无菌水喷施处理为对照,待4月中旬出苗后,叶面喷施聚多曲霉jdqmzz-1菌液,浓度为107 CFU/mL,每2周喷施一次,共处理4次。第4次处理后1周,采摘不同处理的叶片,送北京密码子生物科技有限公司测定内源激素含量,通过LC-MS法测定水杨酸(Salicylic Acid,SA)、茉莉酸(Jasmonic Acid,JA)、脱落酸(Abscisic Acid,ABA)、赤霉素(Gibberellic Acid,GA)、细胞分裂素(Cytokinin)、生长素(Auxin)含量。
华重楼幼苗叶片丙二醛、叶绿素含量检测:以2年生大田华重楼种苗为研究对象,采用完全随机试验设计,重复3次。以无菌水喷施处理为对照,待5月上旬出苗后,叶面喷施聚多曲霉jdqmzz-1菌液,浓度为107 CFU/mL,每2周喷施一次,共处理4次。第4次处理后1周,采摘不同处理的叶片,按照叶绿素及丙二醛测定试剂盒所述方法分别进行测定。
华重楼幼苗地下部分生物量测定:11月初待幼苗倒苗后,收集温室苗和大田苗共同测定其地下部分生物量;分别测量华重楼的根数和根长,去除其根后,留下根状茎,测定根状茎百株重。
1.2.6 统计分析使用SPSS 22.0软件进行方差分析和相关性分析。
2 结果与分析 2.1 聚多曲霉的分离鉴定从华重楼中分离得到一株真菌jdqmzz-1 (图 1):菌丝绒状至絮状,致密有同心环,边缘白色,初生颜色为灰绿色,逐渐变为暗蓝褐色,菌落反面暗褐色,有大量渗出液,色素扩散于基质中呈褐色,基本无气味或具轻微霉味;生理生化鉴定结果与Biolog系统数据库比对,初步鉴定为聚多曲霉;此菌株rDNA ITS序列长度为509 bp,通过NCBI BLAST比对发现与曲霉属菌株Z5 (MN 636770.1)序列一致性为100%,分别选取rDNA ITS序列相似性最高的曲霉属菌株Z5、已有文献报道的具有抗菌作用的聚多曲霉菌株SW9[19]、杀线虫作用的聚多曲霉菌株Snef210[20]和有促生作用的聚多曲霉菌株DJ515-2[21],曲霉属其他菌株包括黄曲霉(Aspergillus flavus) ATCC 16883、烟曲霉(Aspergillus fumigatus) ATCC 1022、构巢曲霉(Aspergillus nidulans) ATCC 10074、寄生曲霉(Aspergillus parasiticus Speare) CBS 260.67、土曲霉(Aspergillus terreus) W0707、杂色曲霉(Aspergillus versicolor) S66,使用MEGA 7.0构建进化树(图 2),此菌株与曲霉属菌株Z5亲缘关系最近,其次是聚多曲霉菌株DJ515-2和Snef210。结合形态学、生理生化鉴定结果(表 1)与测序比对结果,可知筛选得到的真菌jdqmzz-1为聚多曲霉,保藏于中国普通微生物菌种保藏中心,编号为CGMCC No.19278。
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图 1 聚多曲霉jdqmzz-1的培养形态 Figure 1 Culture morphology of Aspergillus sydowii strain jdqmzz-1 |
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图 2 聚多曲霉jdqmzz-1系统进化树 Figure 2 Phylogenetic tree of Aspergillus sydowii strain jdqmzz-1 注:分离的内生真菌编号为jdqmzz-1;括号内序号为GenBank序列号;分支点上的数字为自展值,自展值越大,可信度越高;分支上的数字为进化距离,进化距离越短代表差异越小;标尺为0.2 Note: The number of isolated endophytic fungus is jdqmzz-1; The serial number in brackets is GenBank serial number; The number on the branch point is the self expanding value, the self expanding value larger, the reliability higher; The number on the branch is the evolutionary distance, the evolutionary distance shorter, the difference smaller; The scale is 0.2 |
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碳氮源底物 Carbon and nitrogen source substrates |
结果 Results |
碳氮源底物 Carbon and nitrogen source substrates |
结果 Results |
N-乙酰基-D-半乳糖胺 | - | D-葡萄醛酸 | + |
N-acetyl-D-galactosamine | D-glucuronic acid | ||
N-乙酰基-D-葡萄糖胺 | + | 丙三醇 | - |
N-acetyl-D-glucosamine | Glycerol | ||
N-乙酰胺-D-甘露糖胺 | - | 肝糖 | - |
N-acetamide-D-mannosamine | Liver sugar | ||
核糖醇 | - | M纤维醇 | - |
Ribose alcohol | M-cellulose alcohol | ||
杏苷 | - | 2-酮-D-葡萄糖酸 | + |
Amygdalin | 2-keto-D-gluconic acid | ||
D-阿拉伯糖 | - | α-D-乳糖 | - |
D-arabinose | α-D-lactose | ||
L-阿拉伯糖 | - | 乳果糖 | - |
L-arabinose | Lactulose | ||
D-阿拉伯醇 | - | 麦芽糖醇 | - |
D-arabinol | Maltitol | ||
熊果苷 | + | 麦芽糖 | - |
Arbutin | Maltose | ||
D-纤维二糖 | - | 麦芽三糖 | - |
D-cellobiose | Maltotriose | ||
α-环式糊精 | - | D-甘露醇 | - |
α-cyclodextrin | D-mannitol | ||
β-环式糊精 | - | D-苷露糖 | - |
β-cyclodextrin | D-glucomannose | ||
糊精 | - | D-松三糖 | - |
Dextrin | D-melezitose | ||
赤藻糖醇 | - | D-蜜二糖 | - |
Erythritol | D-cellobiose | ||
D-果糖 | - | α-甲基-D-半乳糖苷 | - |
D-fructose | α-methyl-D-galactoside | ||
L-海藻糖 | - | O-甲基-D-半乳糖苷 | - |
L-trehalose | O-methyl-D-galactoside | ||
D-半乳糖 | - | α-甲基-D-葡萄糖苷 | - |
D-galactose | α-methyl-D-glucoside | ||
D-半乳糖醛酸 | - | O-甲基-D-葡萄糖苷 | - |
D-galacturonic acid | O-methyl-D-glucoside | ||
龙胆二糖 | - | 6-O-D-吡喃葡萄糖酰-D-呋喃果糖 | - |
Gentian disaccharide | 6-O-D-glucopyranosyl | ||
D-葡萄糖酸 | + | D-阿洛酮糖 | - |
D-Gluconic acid | D-aloulose | ||
D-葡萄糖胺 | - | D-蜜三糖 | - |
D-glucosamine | D-melitriose | ||
α-D-葡萄糖 | - | L-鼠李糖 | - |
α-D-glucose | L-rhamnose | ||
α-D-葡萄糖-1-磷酸盐 | + | D-核糖 | - |
α-D-glucose-1-phosphate | D-ribose | ||
葡萄糖醛酰胺 | - | 水杨苷 | - |
Glucuronamide | Salicin | ||
景天庚醛聚糖Sedum heptanaldecan | - | 琥珀酸Succinic acid | + |
D-山梨醇 | - | 琥珀酸甲基酯 | + |
D-sorbitol | Methyl succinate | ||
L-山梨糖 | - | L-丙氨酸酰胺 | - |
L-sorbose | L-alanine amide | ||
水苏糖 | - | L-丙氨酸 | + |
Stachyose | L-alanine | ||
蔗糖 | - | L-丙胺酰胺基乙酸 | |
Sucrose | L-propylamidoacetic acid | + | |
D-塔格糖 | - | L-D-天冬酰胺 | |
D-tagatose | L-D-asparagine | + | |
K-海藻糖 | - | L-D-天冬氨酸 | |
K-trehalose | L-D-aspartic acid | + | |
松二糖 | - | L-谷氨酸 | |
Pinobiose | L-glutamic acid | + | |
木糖醇 | - | 甘氨酰-L-谷氨酸 | |
Xylitol | Glycyl-L-glutamic acid | + | |
D-木糖 | + | 鸟氨酸 | |
D-xylose | Ornithine | + | |
γ-氨基丁酸 | + | L-苯基丙氨酸 | |
γ-aminobutyric acid | L-phenylalanine | + | |
溴代琥珀酸 | - | 脯氨酸 | |
Bromosuccinic acid | Proline | + | |
反丁烯二酸 | + | 焦谷氨酸 | |
Fumaric acid | Pyroglutamic acid | + | |
O-羟基丁酸 | + | L-丝氨酸 | |
O-hydroxybutyric acid | L-serine | + | |
γ-羟基丁酸 | - | L-苏氨酸 | |
γ-hydroxybutyric acid | L-threonine | - | |
P-羟苯乙脂 | + | 2-氨基乙醇 | |
P-hydroxyacetophenone | 2-aminoethanol | - | |
α-酮戊二酸 | + | 腐苷 | |
α-ketoglutarate | Putrescin | - | |
D-乳酸甲基酯 | - | 腺苷 | |
D-lactate methyl ester | Adenosine | - | |
L-乳酸 | + | 尿苷 | |
L-lactic acid | Uridine | - | |
L-苹果酸 | + | 腺苷-5ʹ-磷酸盐 | |
L-malic acid | Adenosine-5ʹ-phosphate | - | |
苹果酸 | + | 癸二酸 | |
Malic acid | Sebacic acid | - | |
奎尼酸 | + | D-葡萄糖二酸 | + |
Quinic acid | D-Gluconic acid | ||
注:+:阳性,表明菌株可以利用底物;-:阴性,表明菌株不能利用底物 Note: +: Positive, indicated that the strain could utilize the substrate; -: Negative, indicated that the strain could not utilize the substrate |
分别将分离得到的华重楼内生真菌聚多曲霉jdqmzz-1、哈茨木霉CL1的菌液稀释50倍和500倍进行种子发芽试验,对照为无菌水处理。玉米种子的发芽指数GI统计结果如表 2所示,根据统计结果可知,聚多曲霉jdqmzz-1相较于哈慈木霉CL1,可极显著(P < 0.01)促进玉米种子的萌发生长。
稀释倍数 Dilution ratio |
聚多曲霉处理 Treatment of Aspergillu ssydowii |
哈茨木霉处理 Treatment of Trichoderma harzianum |
50倍稀释50 times dilution | 4.353±0.011A | 1.485±0.011C |
500倍稀释500 times dilution | 1.881±0.008B | 1.224±0.027D |
注:数据以平均值±标准差表示(n=3),大写字母代表发芽指数LSD法多重比较(P < 0.01) Note: Datas are expressed as mean±standard deviation (n=3), capital letters represent germination index LSD method multiple comparison (P < 0.01) |
将分离得到的内生真菌聚多曲霉jdqmzz-1接种到无氮阿须贝培养基上,如图 3A所示,聚多曲霉可以固氮,无氮培养基上菌落清晰可见;聚多曲霉jdqmzz-1在NBRIP无机磷固体培养基上生长无明显溶磷圈,表明其不解磷。聚多曲霉jdqmzz-1与尖孢镰刀菌平板拮抗如图 3B所示,其菌落浓密,呈圆形或椭圆形,与病原菌的接触面呈凸出月牙形,抑菌平板呈黄褐色,病原菌生长抑制明显,拮抗指数是42.50%。如图 3C所示,聚多曲霉jdqmzz-1菌液对病原细菌的抑菌作用明显。
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图 3 聚多曲霉jdqmzz-1的功能分析 Figure 3 Functional analysis of Aspergillus sydowii strain jdqmzz-1 注:A:固氮活性检测;B:与病原真菌拮抗;C:与病原细菌拮抗 Note: A: Determination of nitrogen fixation activity; B: Antagonistic activity against pathogenic fungus; C: Antagonistic activity against pathogenic bacteria |
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聚多曲霉jdqmzz-1菌液正负离子色谱图见图 4。芬克洛宁为内参物质,菌液代谢物质组成及相对内参物的峰面积比值见表 3,比值越大,表示含量相对越高。由表 3可知,聚多曲霉jdqmzz-1菌液含有多种促生、杀虫、抑菌物质。促生作用的物质主要有玉米赤霉烯酮、甜菜碱、对硝基苯酚;抑菌物质主要有邻苯二甲酸酐、对硝基苯甲酸、N, N-二乙基乙醇胺、2-乙基已酸、水苏碱、儿茶酸、杜鹃花酸、异辛酸、马来酸、壬二酸、氯霉素、乳酸;杀虫物质主要有邻苯二甲酸酐、邻苯二甲酸二丁酯、4-乙基苯胺、白僵菌素、邻苯二甲酸苄丁酯、硬脂胺、尼古丁、己二酸、月桂酸;抗氧化功能物质主要有壬基酚、儿茶酸、羟基脯氨酸。
代谢物 Metabolite |
相对内参物峰面积比值 Ratio of peak area to internal reference |
代谢物 Metabolite |
相对内参物峰面积比值 Ratio of peak area to internal reference |
邻苯二甲酸酐 Phthalic anhydride |
5.253 | 邻苯二甲酸苄丁酯 Benzyl butyl phthalate |
0.315 |
壬基酚 Nonylphenol |
5.006 | 对硝基苯甲酸 P-nitrobenzoic acid |
0.210 |
邻苯二甲酸二丁酯 Dibutyl phthalate |
4.112 | 邻苯二甲酸二乙酯 Diethyl phthalate |
0.205 |
儿茶酸 Catechuic acid |
3.038 | 胆碱 Choline |
0.173 |
玉米赤霉烯酮 Zearalenone |
2.025 | 对硝基苯酚 P-nitrophenol |
0.166 |
氯霉素 Chloramphenicol |
1.588 | 特乐酚 Dinoterb |
0.110 |
芬克洛宁 Finclonine |
1.000 | 丙烯酸 Acrylic acid |
0.074 |
水苏碱 Stachydrine |
0.646 | 乳酸 Lactic acid |
0.071 |
异辛酸 Isooctanoic acid |
0.508 | 壬酸 Nonanoic acid |
0.061 |
2-乙基已酸 2-ethylhexanoic acid |
0.509 | 邻苯二甲酸正丁酯 Dibutyl phthalate |
0.060 |
甜菜碱 Betaine |
0.442 | 丙烯腈 Acrylonitrile |
0.058 |
壬二酸 Azelaic acid |
0.394 | 苯丙氨酸 Phenylalanine |
0.053 |
杜鹃花酸 Rhododendronic acid |
0.394 | 尼古丁 Nicotine |
0.044 |
芥酸酰胺 Erucic acid amide |
0.043 | 白僵菌素 Beauverine |
0.022 |
己二酸 Adipic acid |
0.039 | 苯丙氨酸 Phenylalanine |
0.019 |
乙腈 Acetonitrile |
0.038 | 羟基脯氨酸 Hydroxyproline |
0.018 |
N, N-二乙基乙醇胺 N, N-diethylethanolamine |
0.035 | 可可碱 Theobromine |
0.011 |
甲基丁二酸 Methyl succinic acid |
0.034 | 硬脂胺 Stearylamine |
0.006 |
月桂酸 Lauric acid |
0.034 | 马来酸 Maleic acid |
0.003 |
4-乙基苯胺 4-ethylaniline |
0.028 |
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图 4 聚多曲霉菌液总离子流色谱图 Figure 4 Total ion flow chromatogram of Aspergillus sydowii strain jdqmzz-1 注:A:正离子流色谱图(ESI+);B:负离子流色谱图(ESI-) Note: A: Positive ion flow chromatogram (ESI+); B: Negative ion flow chromatogram (ESI-) |
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聚多曲霉jdqmzz-1菌液处理的华重楼幼苗,叶片内源激素含量如图 5A所示,菌液处理较对照水杨酸、茉莉酸、脱落酸、细胞分裂素的含量极显著下降(P < 0.01),分别下降了16.11%、40.00%、24.44%、20.90%;赤霉素和生长素的含量极显著升高(P < 0.01),分别达到了1 598.72 ng/g和35.80 ng/g,是对照的54.1倍和2.3倍,促进生长的激素含量上升,胁迫相关激素含量下降,尤其是赤霉素的绝对含量远高于其他激素。菌液处理的华重楼幼苗丙二醛和叶绿素含量如图 5B所示,较对照差异均达到极显著水平(P < 0.01),丙二醛含量降低了15.20%,叶绿素含量增加了48.80%,达到了209.88 mg/g鲜重。丙二醛含量下降,叶绿素含量升高,表明jdqmzz-1菌液处理起到了胁迫保护和增强光合作用的效果。聚多曲霉jdqmzz-1处理的华重楼幼苗平均根数、平均根长及平均百株重如表 4所示,较对照有显著差异(P < 0.05),平均根长增加了47.70%,平均根数增加了54.00%,平均百株重增加了67.60%。
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图 5 聚多曲霉jdqmzz-1对华重楼生理生化指标的影响 Figure 5 Effects of Aspergillus sydowii strain jdqmzz-1 on physiological and biochemical indexes of seedlings 注:A:聚多曲霉jdqmzz-1对幼苗内源激素含量的影响;B:聚多曲霉jdqmzz-1对幼苗丙二醛和叶绿素含量的影响。大写字母代表LSD法多重比较(P < 0.01) Note: A: Effect of Aspergillus sydowii strain jdqmzz-1 on endogenous hormone content of seedlings; B: Effect of Aspergillus sydowii strain jdqmzz-1 on malondialdehyde and chlorophyll content of seedlings. Capital letters represent LSD method multiple comparison (P < 0.01) |
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地下部分生物量 Underground biomass |
聚多曲霉 Aspergillus sydowii |
CK |
平均根长Average root length (cm) | 6.400±0.557a | 4.333±0.351b |
平均根数Average of roots number | 4.467±0.208a | 2.900±0.264b |
平均百株重Average hundred plant weight (g) | 6.033±0.473a | 3.600±0.458b |
注:数据以平均值±标准差表示(n=3),小写字母代表LSD法多重比较(P < 0.05) Note: Datas are expressed as mean ± standard deviation (n=3), lowercase letters represented multiple comparisons at the level of significant difference (P < 0.05) |
聚多曲霉jdqmzz-1处理差异显著的指标进行相关性分析如表 5所示。水杨酸与脱落酸、丙二醛呈正相关,而与赤霉素、生长素、平均根数、平均根长、平均百株重、叶绿素呈负相关;茉莉酸与脱落酸、丙二醛呈正相关,而与赤霉素、生长素、平均根数、叶绿素呈负相关;脱落酸与丙二醛呈正相关,而与赤霉素、生长素、平均根数、平均根长、平均百株重、叶绿素呈负相关;赤霉素与丙二醛呈负相关,而与生长素、平均根数、平均根长、平均百株重、叶绿素呈正相关;细胞分裂素与丙二醛正相关,与叶绿素负相关;生长素与丙二醛负相关,与平均根数、平均根长、平均百株重、叶绿素呈正相关;丙二醛与叶绿素负相关;平均根数、平均根长、平均百株重彼此之间正相关,分别与丙二醛负相关,而与叶绿素正相关。相关系数绝对值较大,表明相关性较强。
氮素是植物生长发育过程中的必需元素,微生物可以通过固氮作用直接促进植物生长[22]。重楼是一种喜氮作物,氮素能促进华重楼光合速率提高和生物量累积[23]。本研究分离到的内生真菌分别属于镰刀菌属、曲霉属、木霉属(Trichoderma)、新赤壳属(Neocosmospora),其中一株曲霉属菌株聚多曲霉jdqmzz-1具有固氮作用,分泌促生和抑菌杀虫物质,对根腐病病原菌尖孢镰刀菌(GSICC 60612)、细菌性软腐病病原菌胡萝卜软腐果胶杆菌胡萝卜亚种(ATCC 15713)具有拮抗作用。Niu等[24]从深海中分离到一株聚多曲霉MCCC 3A00324,可以产生单萜类和聚酮类化合物,具有抗菌作用。本研究聚多曲霉jdqmzz-1产生的抗菌杀虫物质不同,主要为苯环型化合物、有机酸类化合物、聚酮类化合物、吡啶类化合物等。
聚多曲霉jdqmzz-1促进华重楼幼苗生长的作用显著,其分泌的促生成分有玉米赤霉烯酮、甜菜碱、对硝基苯酚,抗氧化剂有壬基酚、儿茶酸、羟基脯氨酸。玉米赤霉烯酮有促进萝卜黄化子叶变绿和增重的作用[25],甜菜碱具有植物促生作用[26],对硝基苯酚对生根具有促进作用;壬基酚和儿茶酸激活植物抗氧化酶系统,从而减轻过度光照对作物产生的氧化损伤[27-28],羟基脯氨酸是最主要的抗胁迫物质之一。综上所述,聚多曲霉jdqmzz-1菌液具有直接的促生和胁迫保护作用。聚多曲霉jdqmzz-1处理华重楼幼苗,叶绿素、赤霉素、生长素含量显著提高,丙二醛、水杨酸、茉莉酸、脱落酸含量显著降低。叶绿素、赤霉素、生长素与植物生物量存在正相关关系是本领域的公知常识,也有报道认为赤霉素可以提高叶绿素含量,从而提高植物叶片的光合性能[29],本研究结果也表明赤霉素与叶绿素存在正相关关系。水杨酸、茉莉酸、脱落酸这3种胁迫相关激素及丙二醛含量显著降低,从植物生理生化的角度印证了其分泌物具有直接的胁迫保护作用,不激活抗性基因的过表达,避免了生物量受到影响。当植物生长过程中遭受生物和非生物胁迫时,水杨酸、茉莉酸、脱落酸大量合成,诱导抗病相关和非生物胁迫抗性相关基因表达,提高抗性生理功能,降低生长速率[30-31],而聚多曲霉jdqmzz-1没有激活水杨酸、茉莉酸、脱落酸的上调表达,但显著促进生长、提高胁迫抗性,除了与其分泌物有关外,深层机理有待通过组学联用技术深入研究。
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