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文章信息
- 戴雨芸, 李超, 袁中伟, 李欣越, 何泾正, 尹立子
- DAI Yu-Yun, LI Chao, YUAN Zhong-Wei, LI Xin-Yue, HE Jing-Zheng, YIN Li-Zi
- 香芹酚抑制金黄色葡萄球菌生物被膜的形成
- Inhibition of Staphylococcus aureus biofilm by carvacrol
- 微生物学通报, 2020, 47(3): 813-820
- Microbiology China, 2020, 47(3): 813-820
- DOI: 10.13344/j.microbiol.china.190539
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文章历史
- 收稿日期: 2019-06-30
- 接受日期: 2019-09-06
- 网络首发日期: 2019-10-17
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)为革兰氏阳性菌,隶属葡萄球菌属,遍及自然界各处。金黄色葡萄球菌属于人畜共患病原菌,能引起人和动物的多种感染性疾病:小到皮肤感染、炎症反应,大到肺炎、败血症、脓毒症等疾病[1]。另外,由于临床上长期使用抗生素类药物治疗金黄色葡萄球菌感染,导致耐药菌株频现,增加了治疗难度[2]。
现代研究表明,金黄色葡萄球菌形成的生物被膜是导致细菌耐药性加强的原因之一[3]。生物被膜是一种细菌聚集膜状物,由细菌附着在某物体表面,同时分泌大量胞外多糖蛋白复合物将自身包裹而形成[4]。生物被膜形成后细菌在生物被膜中,治疗时需加大剂量或增加给药次数,容易产生细菌耐药性和药物残留,还可以随着生物被膜中存活细菌的再次释放,引起反复性感染或潜伏性感染[5]。因此,找到有效控制和清除金黄色葡萄球菌生物被膜的药物具有重要意义。
近年来相关研究发现,天然药物与化学合成药物相比在抗细菌生物被膜上有一定的优势,但具体的作用机制仍旧缺乏系统地研究[6]。香芹酚(2-甲基-5-异丙基苯酚),又名香荆芥酚,广泛存在于自然界的芳香植物中,是牛至和百里香等植物精油的主要成分[7],具有抗菌、抗氧化、抗炎、调节血糖和增强机体免疫力等多种生物学功效[8]。香芹酚的抗菌效果较好,是一种广谱的抗菌剂[9]。近年来的研究显示,香芹酚对金黄色葡萄球菌具有较强的抑菌活性,MIC (minimum inhibitory concentration)为128−256 μg/mL,MBC (minimum bactericidal concentration)为512 μg/mL,且对金黄色葡萄球菌生物被膜的形成有显著影响[10],但目前关于香芹酚对生物被膜的作用机制尚不完全明确。因此本文以金黄色葡萄球菌ATCC25923为供试菌株,探讨香芹酚对生物被膜的作用机制,为新型抗生物被膜药物的开发提供可靠的理论依据。
1 材料与方法 1.1 主要试剂和仪器RNA抽提试剂盒,北京天漠科技开发有限公司;EvaGreen 2×qPCR MasterMix-No Dye、DNase/RNase-Free Water,Applied Biological Materials Inc (ABM)。酶标仪、微量分光光度计,赛默飞世尔科技公司;实时荧光定量PCR仪,Bio-Rad公司。
1.2 实验材料金黄色葡萄球菌ATCC25923,美国标准菌种库;香芹酚(纯度 > 98%),上海麦克林生物技术有限公司;DMSO,索莱宝生物科技有限公司;脑心浸肉液汤(BHI)培养基,青岛海博生物科技有限公司。刚果红平板(g/L):刚果红0.8,脑心侵液37.0,蔗糖50.0,琼脂10.0,1×105 Pa灭菌30 min。
1.3 香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜形成的抑制作用将含不同浓度香芹酚(0、8、16、32、64 μg/mL)的金黄色葡萄球菌菌悬液培养至对数期OD600为0.6,加入96孔板,再加入含药的3%蔗糖BHI培养基,使香芹酚浓度不变。混匀后置于37 ℃厌氧条件下培养不同时间(6、12、18、24 h)。移除96孔板中培养基,加10%的甲醛固定过夜,移除甲醛,0.1%结晶紫染色30 min,双蒸水洗涤后干燥,加入33%的冰乙酸溶液,充分混匀后,置于酶标仪下测定OD490[11]。实验重复3次,取平均值。
1.4 香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜的清除作用参照张忠斌等[12]的试验方法,金黄色葡萄球菌生物被膜培养成熟后,用PBS洗涤3次以去除游离菌,加入不同浓度的香芹酚(0、32、64、128、256、512 μg/mL),置于37 ℃培养不同时间(6、12、24 h)后,移除培养基,加入10%甲醛固定过夜,移除甲醛,0.1%结晶紫染色后弃去染液。再用PBS洗涤3次,加入33%的冰乙酸溶液,混匀,用酶标仪测定OD490。实验重复3次,取平均值。
在96孔板中培养成熟的金黄色葡萄球菌生物被膜,用PBS洗涤3次以去除游离菌。各孔中加入等体积的香芹酚和苯唑西林,使香芹酚的终浓度为0、32、64、128、256、512 μg/mL,苯唑西林的终浓度为0、0.125、0.25、0.5、1、2 μg/mL,置于37 ℃厌氧培养24 h[13]。按上述结晶紫染色法处理后,测定OD490,以反映对成熟生物被膜的影响。实验重复3次,取平均值。
1.5 香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜形成过程中细胞间多糖黏附素合成的影响参照官妍等[14]方法,将培养过夜后的金黄色葡萄球菌菌悬液分别取10 μL接种到含有不同浓度香芹酚的刚果红平板上(0、32、64、128、256 μg/mL)。置于37 ℃培养箱培养24 h后,观察实验结果,实验重复3次。
1.6 香芹酚对金黄色葡萄球菌胞外DNA释放的影响将培养至对数期的金黄色葡萄球菌菌悬液加入6孔板中,向其中加入含不同香芹酚浓度的3%蔗糖BHI培养基,使终质量浓度为0、32、64、128、256 μg/mL,放置于37 ℃培养箱培养24 h。按Rice等[15]的方法提取胞外DNA (extracellular DNA,eDNA),用分光光度计检测OD260/OD280比值。eDNA的相对表达量用单位生物膜内eDNA含量表示。实验重复3次,取平均值。
1.7 香芹酚对金黄色葡萄球菌基因表达量的影响采用Primer 5软件设计金黄色葡萄球菌生物被膜相关基因sarA、icaA及cidA的上下游引物(表 1),用1%琼脂糖凝胶电泳检测其PCR扩增产物。将含不同浓度香芹酚(0、8、16、32、64 μg/mL)的菌悬液培养至OD600=1.8后,采用Trizol法,根据RNA抽提试剂盒说明书提取总RNA,然后反转录合成cDNA,最后进行荧光定量PCR扩增,将测定结果绘制成柱状图[16]。试验重复3次,取其平均值。
Primer | Sequence (5′→3′) | Length (bp) |
icaA-F | TTTCGGGTGTCTTCACTCTAT | 229 |
icaA-R | CGTAGTAATACTTCGTGTCCC | |
cidA-F | GATTTTTCATCTTCCCTTAGCCG | 300 |
cidA-R | GCGTCTACACCTTTACGATGTTTAT | |
sarA-F | TTGTTTTCGCTGATGTAT | 100 |
sarA-R | CAATGGTCACTTATGCTG |
PCR反应体系(20 μL):2×Taq PCR MasterMix 10 μL,DNase/RNase-Free Water 7 μL,上、下游引物(10 μmoL/L)各1 μL,DNA模块1 μL。PCR反应条件:95 ℃ 1 min;98 ℃ 5 s,52 ℃ 20 s,72 ℃ 15 s,34个循环;72 ℃ 5 min,20 ℃保温。荧光定量PCR反应体系(20 μL):EvaGreen 2×qPCR MasterMix-No Dye 10 μL;DNase/RNase-Free Water 7 μL;上、下游引物(10 μmol/L)各1 μL;cDNA 1 μL。PCR反应条件:95 ℃ 10 min;98 ℃ 5 s,52 ℃ 20 s,72 ℃ 15 s,39个循环;65 ℃ 5 s,95 ℃ 5 s。
1.8 数据分析实验结果通过Prism 5.0进行数据分析(t检验法),结果表示为平均值±标准差。
2 结果与分析 2.1 香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜形成的抑制作用在亚抑菌浓度的香芹酚作用下,金黄色葡萄球菌生物被膜的形成显著减少。终质量浓度为8、16、32、64 μg/mL的香芹酚作用18 h后,实验结果如图 1所示,金黄色葡萄球菌生物被膜总量与对照组相比较分别减少24.72%±2.61% (P < 0.01)、35.35%±2.10% (P < 0.01)、61.81%±2.88% (P < 0.01)、81.47%±2.64% (P < 0.01)。香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜的形成有较强的抑制效果,并呈现浓度依赖性。
香芹酚抑制金黄色葡萄球菌生物被膜形成的时间分析结果如图 2所示。由图 2可知,当香芹酚的作用时间为6 h时,几乎不影响金黄色葡萄球菌生物被膜,从12 h开始对金黄色葡萄球菌生物被膜的形成有抑制作用。与空白对照组相比较,8 μg/mL的香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜形成的影响较小,随着作用时间的增长,抑制效果的改变极微弱。
2.2 香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜的清除作用由图 3可知,当香芹酚质量浓度为256、512 μg/mL时,对金黄色葡萄球菌生物被膜的清除作用显著,与空白对照组相比,其清除率分别为73.32%±3.93% (P < 0.01)和81.11%±1.35% (P < 0.01)。在亚抑菌浓度下,香芹酚对生物被膜清除效果不明显。
香芹酚与苯唑西林共同作用对金黄色葡萄球菌成熟生物被膜影响的实验结果如表 2所示,当苯唑西林的浓度为0.125−0.25 μg/mL时,对供试菌株生物被膜形成有诱导效果,在一定程度上促进它的形成。苯唑西林与香芹酚共同作用于金黄色葡萄球菌时,对成熟生物被膜的清除作用加强。
Oxacillin concentration (μg/mL) | Carvacrol concentration (μg/mL) | |||||
0 | 32 | 64 | 128 | 256 | 512 | |
0 | 1.607±0.045 | 0.948±0.118 ** | 0.905±0.197 ** | 0.997±0.128 ** | 0.608±0.038 ** | 0.424±0.038 ** |
0.125 | 1.900±0.032 ** | 1.801±0.391 | 2.113±0.402 | 1.473±0.306 | 0.520±0.096 ** | 0.476±0.006 ** |
0.250 | 2.161±0.069 ** | 1.891±0.105 * | 1.717±0.517 | 0.601±0.072 ** | 0.547±0.085 ** | 0.462±0.011 ** |
0.500 | 1.313±0.107 * | 1.182±0.380 ** | 0.417±0.019 ** | 0.567±0.028 ** | 0.559±0.102 ** | 0.441±0.093 ** |
1.000 | 0.644±0.028 ** | 0.574±0.098 ** | 0.497±0.051 ** | 0.574±0.085 ** | 0.569±0.022 ** | 0.489±0.051 ** |
2.000 | 0.535±0.046 ** | 0.510±0.085 ** | 0.528±0.124 ** | 0.593±0.067 ** | 0.419±0.901 ** | 0.402±0.076 ** |
注:**:与空白对照组相比较,P < 0.01,t检验;*:与空白对照组相比较,P < 0.05,t检验. Note: **: Compare with blank control group, P < 0.01, t test; *: Compare with blank control group, P < 0.05, t test. |
将菌液接种到刚果红平板培养后,其中菌落颜色呈黑色为PIA阳性菌落,菌落呈红色为PIA阴性菌落。实验结果显示(图 4),随着香芹酚浓度的增加,PIA的合成量逐渐减少,说明香芹酚可以抑制金黄色葡萄球菌生物被膜中的PIA合成。
2.4 香芹酚对金黄色葡萄球菌eDNA分泌的影响实验结果如图 5所示,低浓度的香芹酚即可对金黄色葡萄球菌生物被膜eDNA的释放有抑制效果。随着药物浓度的增加,抑制作用加强,在256 μg/mL的香芹酚作用24 h后,与空白对照组相比较,eDNA的释放量降低了83.19%±1.74% (P < 0.01)。
2.5 香芹酚对金黄色葡萄球菌基因转录水平的影响琼脂糖凝胶电泳检测结果显示(图 6A),供试菌株中的sarA、cidA和icaA都有表达,且条带单一。RT-PCR结果显示(图 6B),香芹酚可影响供试菌株中的sarA、cidA和icaA转录水平。64 μg/mL的香芹酚作用于金黄色葡萄球菌后,与空白对照组相比,sarA的转录水平降低了60.44%±2.91%;cidA的转录水平降低了76.48%±1.67%;icaA的转录水平降低了70.00%±1.94%。
3 讨论与结论细菌生物膜是与游离菌不同的另一种存在形式。相关研究表明,生物被膜一旦形成后细菌数量将显著增加,且可以躲避免疫系统的识别与巨噬细胞的吞噬[17]。另外,生物被膜中的细菌对药物的敏感性也大大下降,使用抗生素清除生物膜需要的剂量大概是浮游菌的5 000倍左右[18]。
本研究中,我们探究了香芹酚对金黄色葡萄球菌生物被膜的作用。结果表明,香芹酚抑制金黄色葡萄球菌标准菌株生物被膜形成和清除成熟的生物被膜均有较强作用。目前,抗生素类药物是临床治疗金黄色葡萄球菌感染的有效方法,但单独使用某种抗生素很容易出现耐药菌株[19]。近年来相关研究表明,金黄色葡萄球菌对苯唑西林耐药率显著增加,所以联合用药成为目前的首选解决方案[20]。本实验研究结果显示,当大于0.25 μg/mL的苯唑西林与香芹酚联合应用时较单一用药效果增强,且呈现一定浓度依赖性。
生物被膜形成是一个十分繁杂的过程,涉及到多种基因的表达与调控,是各种因素共同作用的结果。胞外多糖、蛋白质以及胞外DNA等是生物被膜的主要组成成分。PIA的合成在生物被膜的黏附和聚集阶段起至关重要的作用[21]。PIA合成减少,会导致菌株间黏附能力降低,随之生物被膜的形成能力也下降。eDNA是菌株程序性死亡并溶解后释放到细胞外的DNA,主要的作用是在黏附阶段起连接作用,在成熟被膜中起稳定结构的作用[22]。本研究结果显示,香芹酚可明显地抑制PIA合成与eDNA释放,从而减少生物被膜的形成。
在生物被膜形成过程中,ica操纵子是合成PIA的关键因子,也是参与金黄色葡萄球菌生物被膜形成的主要调控基因,ica的调控可以减少细菌间的黏附和聚集进而破坏生物被膜稳定性。ica操纵子包括串联存在的icaABCD 4个功能基因团,其中icaA编码合成的icaA蛋白具N-乙酰葡聚糖转移酶活性,在icaA操纵子中功能最为显著[23]。cid操纵子是参与细菌的程序性死亡和溶解的主要基因。细菌的程序性死亡和溶解产生eDNA,所以cid操纵子参与eDNA释放的调控[24-25]。sarA是金黄色葡萄球菌的主要毒力基因表达调控系统。sarA可通过与ica操纵子的启动子结合来促进ica的表达,达到影响PIA合成的效果;通过降低胞外蛋白酶的分泌间接影响核酸酶活性,从而降低eDNA的释放[26]。研究表明,sarA属于全局调控因子,不论体内或体外都可通过调控金黄色葡萄球菌生物被膜的相关基因表达进而影响生物被膜的形成[27]。在本研究中,通过荧光定量RT-PCR技术检测了icaA、cidA及sarA 3种基因转录水平,结果显示,与空白对照组相比,加入香芹酚后3种基因表达均受到抑制,且呈浓度剂量依赖。由此可以证实,香芹酚抑制金黄色葡萄球菌生物被膜PIA的合成与icaA和sarA调控有关,eDNA的释放与cidA的调控有关。
综上所述,香芹酚可以有效地抑制和清除金黄色葡萄球菌ATCC25923的生物被膜。其作用机制主要是通过抑制icaA、cidA和sarA基因的转录水平,减少PIA的合成与eDNA的释放,达到抑制生物被膜形成和清除成熟生物被膜的效果,但香芹酚降低相关基因转录水平的具体方式以及其他机制还有待更深入的探究。
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