微生物学通报  2020, Vol. 47 Issue (11): 3564−3576

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马新, 史娟, 李杨, 韩宇
MA Xin, SHI Juan, LI Yang, HAN Yu
苜蓿假盘菌子囊孢子萌发特性及子实体超微结构观察
Ascospore germination characteristics and the ultrastructure observation of fruit body of Pseudopeziza medicaginis
微生物学通报, 2020, 47(11): 3564-3576
Microbiology China, 2020, 47(11): 3564-3576
DOI: 10.13344/j.microbiol.china.190966

文章历史

收稿日期: 2019-11-21
接受日期: 2020-01-27
网络首发日期: 2020-04-09
苜蓿假盘菌子囊孢子萌发特性及子实体超微结构观察
马新 , 史娟 , 李杨 , 韩宇     
宁夏大学农学院    宁夏  银川    750001
摘要: 【背景】 苜蓿假盘菌(Pseudopeziza medicaginis)侵染苜蓿叶片引起的褐斑病是苜蓿的重要病害之一。研究表明,该菌以子囊盘越冬,翌年释放子囊孢子完成初侵染,因此观察该菌子实体的超微结构特征,有利于进一步揭示子囊菌的侵染机制。【目的】 明确P. medicaginis子囊孢子萌发、Ca2+信号途径是否参与调控附着胞形成;观察子囊孢子和子实体的超微结构特征。【方法】 采用光学显微镜技术,研究不同碳、氮源和Ca2+/CaM信号途径对P. medicaginis子囊孢子萌发、附着胞形成的影响,并采用电镜技术观察子实体和子囊孢子的超微结构。【结果】 碳、氮源有利于P. medicaginis子囊孢子的萌发,葡萄糖、麦芽糖、蔗糖、氨基乙酸、酵母粉、尿素、蛋白胨、硝酸铵、硝酸钠等碳、氮源诱导形成附着胞,以尿素诱导效果最明显;Ca2+不仅促进子囊孢子的萌发,显著诱导附着胞的形成,而且高于碳、氮源;10 mmol/L的Ca2+诱导效果最明显,随其浓度的增加,子囊孢子的萌发率和附着胞的形成率下降;低浓度Ca2+螯合剂EGTA诱导形成附着胞,≥1 mmol/L抑制子囊孢子的萌发,外源Ca2+或Ca2+载体A23187能够部分解除EGTA的抑制作用;磷酸酯酶抑制剂Neomycin、Ca2+通道阻断剂Nicardipine、CaM拮抗剂Chloropromazine完全抑制子囊孢子的萌发。成熟的P. medicaginis子实体突破寄主表皮,中间开裂露出子囊,子囊孔口无囊盖,呈横向裂口状。子囊孢子表面具有环形纹饰,细胞核色深,线粒体等细胞器数量多,脂类物质数量多且发达,胞内充满电子致密度高的物质。【结论】 碳、氮源和Ca2+可诱导P. medicaginis子囊孢子形成附着胞,钙信号途径参与P. medicaginis子囊孢子的萌发和附着胞形成过程的调控。子实体突破寄主表皮外露呈开裂式,子囊顶端无囊盖,线粒体发达。该研究结果为P. medicaginis的深入研究提供重要细胞学事件。
关键词: 苜蓿假盘菌    子囊孢子    萌发    附着胞    Ca2+信号途径    超微结构    
Ascospore germination characteristics and the ultrastructure observation of fruit body of Pseudopeziza medicaginis
MA Xin , SHI Juan , LI Yang , HAN Yu     
School of Agriculture, Ningxia University, Yinchuan, Ningxia 750001, China
Abstract: [Background] Medicago sativa common leaves spot caused by Pseudopeziza medicaginis is a main fungal disease in M. sativa. This strain can overwinter by the formation of apothecia and then release ascospore to complete primary infection. Thus we observed the fruit body under an electron microscope for exploring the colonization mechanism of P. medicaginis. [Objective] To clarify the conditions of ascospore germination, whether the Ca2+ signal pathway is involved in the form of appressoria and observe the ultrastructure of the ascospore and fruit body of P. medicaginis. [Methods] Effect of different types of carbon and nitrogen sources and the different doses of Ca2+ on ascospore germination and appressoria form were studied by optical microscope. The ultrastructure of the fruit body and ascospore were observed by a transmission electron microscope. [Results] Carbon and nitrogen sources benefited the ascospore germination. Glucose, maltose, sucrose, amino acetic acid, yeast powder, urea, peptone, ammonium nitrate, sodium nitrate and so on could induce the formation of appressorium. Urea had the strongest effect. The Ca2+ not only could promoted the germination of ascospores but also could induce the formation of appressorium, the effect was better than adding carbon and nitrogen sources. With Ca2+ concentration increased, the rate of ascospore germination and the rate of appressoria formation increased, the best dose of Ca2+ was 10 mmol/L, once exceed this dose, the rate of ascospore germination and the rate of appressoria formation decreased. With exogenous Ca2+ or A23187 which is Ca2+ carrier addition, the inhibition role of EGTA could partially relieved. Neomycin, an inhibitor of phospholipase, nicardipine which could block Ca2+ channels, chlorpromazine, CAM antagonist could inhibit the germination of ascospores of this strain. The mature P. medicaginis fruit body broke through the epidermis of the host, and the middle part of the fruit body cracked to expose the ascus. The surface of ascospore had a ring-shaped pattern, the nucleus was dark, the number of organelles such as mitochondria is large, the number of lipids was large and developed, and the cells were filled with high electron density materials. [Conclusion] Ca2+ signal pathway was involved in the process of ascospore germination and charge of the appressoria formation of P. medicaginis.
Keywords: Pseudopeziza medicaginis    Sporocarp    Germination    Attachment spores    Ca2+ signal pathway    Ultrastructural    

苜蓿假盘菌(Pseudopeziza medicaginis)侵染苜蓿叶片引起的苜蓿褐斑病是苜蓿生产中的主要病害之一,该病广泛分布于国内外苜蓿产区[1],轻则引起落叶,严重时不仅影响苜蓿的产量和品质[2],而且产生的香豆雌酚等类黄酮物质会引起家畜的流产和不育[3-5]。近年随着草畜产业的发展,苜蓿种植面积的增加,褐斑病的发生呈上升趋势,对苜蓿的健康、安全生产和优质牧草加工等产生了严重的威胁[6]。因此,研究苜蓿褐斑病的发生机理对于科学控制病害发生流行具有重要的现实意义。已有研究表明,在P. medicaginis的生活史中尚未发现无性阶段[7-10],在田间该病害的侵染循环通过有性生殖产生的假子囊盘越冬,翌年通过子囊盘弹射释放出子囊孢子进行田间传播和侵染苜蓿叶片完成初侵染[11-12]。因此,探讨子囊孢子萌发特性对于深入解析病菌侵入机制具有重要的意义。

病原菌侵入寄主前,子囊孢子萌发形成芽管,继而在芽管顶端形成附着胞等侵染结构帮助其侵入寄主[13]。因此,子囊孢子的萌发和附着胞的形成对病原菌成功侵入寄主并完成初侵染具有重要意义[14]。研究表明,适当地添加碳、氮源有利于子囊孢子的萌发[15-16]。曾大兴等[17]研究发现,附着胞形成过程会受到来自寄主叶片或植株部位表面其他信息的诱导。王立安等[18]的研究结果表明,稻瘟病菌(Magnaporthe grisea)附着胞的形成过程受不同信号途径的调控,其中Ca2+信号途径参与了M. grisea孢子及疏水条件下附着胞形成过程的调控。苜蓿褐斑病菌侵染过程的研究结果表明,P. medicaginis子囊孢子成功侵入寄主细胞并不形成附着胞,而是通过芽管以直接侵入方式侵入寄主表皮细胞完成初侵染[12]。碳、氮源和Ca2+信号途径是否参与苜蓿褐斑病菌子囊孢子附着胞的形成目前尚不清楚,明确这一问题可为进一步解析调控附着胞形成的途径提供试验证据。本研究探讨了不同碳、氮源和外源Ca2+及其抑制剂对子囊孢子萌发和附着胞形成的影响,观察了子实体和子囊孢子的细胞学特征。研究结果为进一步从分子水平揭示附着胞的形成机制以及苜蓿褐斑病绿色防控提供试验依据。

1 材料与方法 1.1 材料

1.1.1 供试菌株

苜蓿假盘菌(Pseudopeziza medicaginis)由实验室分离培养所得[8]

1.1.2 培养基

V8-CaCO3培养基的配制参考文献[8];基础培养基:琼脂10.0 g/L。

1.1.3 主要试剂和仪器

EGTA,上海化工试剂公司;A23187、Neomycin,Sigma公司;Nicardipine、Choropromazine,大连美仑生物技术有限公司;CaCl2,河北华晨药业有限公司。奥林巴斯显微镜,Olympus有限公司;超薄切片机,Leica公司;蔡司热场发射扫描电镜,卡尔·蔡司股份公司;透射电子显微镜,株式会社日立制作所。

1.2 方法

1.2.1 P. medicaginis子囊孢子的获得

将V8-CaCO3平板上培养成熟的子实体进行扩繁[19]。20 ℃黑暗条件培养20 d左右即形成成熟的子囊盘,供接种用。

1.2.2 接种与子囊孢子预培养

采用逆向产孢法进行接种[12],挑取成熟的P. medicaginis子实体,移至底部铺有滤纸的培养皿盖内侧,喷足量的灭菌水保湿,置于20 ℃黑暗条件预培养6 h即为子囊孢子接种源。

1.2.3 不同碳、氮源对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响

以0.1 mol/L的碳、氮量为标准,分别向基础培养基中加入碳、氮源灭菌后滴入凹玻片,置于1.2.2预培养的接种源下方进行逆向产孢接种,20 ℃黑暗条件培养。分别于接种后的4、6、8、12、24、48和72 h观察,奥林巴斯显微镜下观察子囊孢子的萌发、附着胞的形成以及初始菌落的形成、测量芽管长度并拍照。3次重复,以水琼脂为对照。

1.2.4 Ca2+/CaM信号途径参与调控研究

采用凹玻片法试验观察。依据表 1中的浓度分别配制成1%水琼脂的培养基,按照1.2.3方法接种和观察。3次重复。

表 1 外源物质种类及浓度/比例 Table 1 Types and concentration/proportion of exogenous substances
作用方式
Mode of action
外源物质
Exogenous substance
外源物质浓度/比例
Concentration/Proportion of exogenous substance (mmol/L)
外源Ca2+
Exogenous calcium ion
氯化钙
Calcium chloride, CaCl2
0.1, 1, 10, 100
Ca2+螯合剂
Calcium ion chelating agent
乙二醇-双-(2-氨基乙醚)四乙酸
Ethylene glycol bis (2-aminoethyl ether)-N, N, Nʹ, Nʹ-tetraacetic acid, EGTA
0.1, 1, 10
EGTA的解除作用
Relieving effect of EGTA
EGTA:CaCl2 10:1, 1:1, 1:10
Ca2+载体
Calcium ion vector
EGTA: A23187 10:0.01
磷酸酯酶抑制剂
Phosphatase inhibitor
硫酸新霉素
Neomycin sulphate
0.1, 1, 10, 100
CaM拮抗剂
CaM antagonist
盐酸氯丙嗪
Chloropromazine
0.1, 1, 10, 100
Ca2+通道阻断剂
Calcium channel blockers
盐酸尼卡地平
Nicardipine hydrochloride
0.1, 1, 10, 100

1.2.5 P. medicaginis子实体光学显微镜样品的制备和观察

选取V8-CaCO3培养基上成熟的菌落,参照姚娟妮等[20]的方法制备样品。将制备好的样品在解剖镜下进行修块,在超薄切片机上切片,用1%甲苯胺蓝染色液染色,经流动水冲洗染色液并烤干,在显微镜下进行观察和拍照。

1.2.6 扫描电镜样品的制备和观察

选取病叶上发育成熟的病斑,按照姚娟妮等[20]的方法制备扫描样品。蔡司热场发射扫描电镜下观察和拍照。

1.2.7 P. medicaginis子实体透射电镜样品的制备和观察

选取V8-CaCO3培养基上成熟的菌落,参照姚娟妮等[20]的方法制备投射观察样品。通过半薄切片进行样品定位,超薄切片在透射电子显微镜观察并拍照。

1.2.8 结果观察及处理方法

观察统计孢子的萌发率、附着胞的形成率和初始菌落的形成率。以芽管长度达到孢子宽度的一半时即可视为孢子萌发,菌丝集结即视为初始菌落的形成。

孢子萌发率(%)=(孢子萌发数/总孢子数)×100;附着胞形成率(%)=附着胞形成个数/孢子萌发数×100。使用Excel 2003进行数据处理,应用统计分析软件SPSS 20.0进行单因素方差分析。

2 结果与分析 2.1 碳源对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响

表 2可知,不同碳源对P. medicaginis子囊孢子的萌发率、芽管长度、附着胞、菌落形成均有显著影响。对子囊孢子萌发率的影响最大的是葡萄糖,为56.06%,其次是麦芽糖、甘油、乳糖和蔗糖,对照最低为18.55%;对芽管长度的影响最大的是麦芽糖,为24.01 μm,其次是甘油、乳糖、葡萄糖和蔗糖,对照最低为6.61 μm;子囊孢子的萌发时间在4−8 h。麦芽糖、蔗糖、葡萄糖促进芽管末端膨大形成椭圆形的附着胞(图 1),乳糖、甘油及对照不能形成附着胞,附着胞形成时间在6−8 h;48 h形成菌落,对菌落形成影响最大的是葡萄糖,为67.27%,其次为蔗糖、乳糖、甘油、麦芽糖,对照始终未形成菌落。

表 2 碳源对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响 Table 2 Effects of carbon source on ascospore germination of P. medicaginis
碳源种类
Types of carbon source
子囊孢子萌发率
Germination rate of ascospores (%)
芽管长度
Length of bud tube (μm)
附着胞形成率
Formation rate of appressorium (%)
菌落大小
Colony size
附着胞特征
Characteristics of appressorium
长度
Length (μm)
宽度
Width (μm)
对照
CK
18.55±1.01a 6.61±0.33c 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
葡萄糖
Glucose
56.06±0.34c 15.83±1.85b 19.59±0.34c 67.27±1.02e 64.44±1.32d 椭圆形
Oval
麦芽糖
Maltose
54.93±0.74d 24.01±3.73a 16.37±0.37b 50.38±0.63b 48.31±0.86b 椭圆形
Oval
乳糖
Lactose
34.05±0.43b 16.88±2.33b 0.00±0.00a 56.49±1.03d 54.21±1.04c
蔗糖
Sucrose
33.26±0.34b 15.26±3.07b 22.48±0.54d 67.25±1.78e 66.57±1.30d 椭圆形
Oval
甘油
Glycerol
38.87±0.18e 20.18±4.22ab 00.00±0.00a 52.37±1.23c 50.48±1.08bc
注:表中各数据为每个处理的平均值±标准误;列中不同小写字母表示每个因素各水平间差异达显著水平(P < 0.05);−:该条件下未见附着胞形成.
Note: All data are the mean value of each treatment±standard error; Different lowercase letters denote significant difference (P < 0.05) in each column; −: no adherent cell is formed under this condition.

图 1 不同碳、氮源对P. medicaginis子囊孢子附着胞形成的影响(400×) Figure 1 Effect of different carbon and nitrogen sources on the appressorium formation of P. medicaginis (400×) 注:A:葡萄糖;B:麦芽糖;C:蔗糖;D:氨基乙酸;E:酵母粉;F:尿素;G:硝酸钠;H:对照. Note: A: Glucose; B: Maltose; C: Sucrose; D: Aminoacetic acid; E: Yeast powder; F: Urea; G: Sodium nitrate; H: CK.
2.2 氮源对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响

表 3可知,不同氮源对P. medicaginis子囊孢子的萌发率、芽管长度、附着胞、菌落形成均有显著影响。对子囊孢子萌发率影响最大的是酵母粉,为88.39%,其次是硝酸钠、蛋白胨、氨基乙酸、牛肉膏、尿素、硝酸铵,硫酸铵、草酰乙酸的影响低于对照,草酰乙酸影响最低,为6.88%;对芽管长度影响最大的是硝酸铵,为27.98 μm,其次是尿素、蛋白胨、硫酸铵、酵母粉、硝酸钠、牛肉膏、草酰乙酸、氨基乙酸,对照最低,为6.61 μm;子囊孢子的萌发时间集中在5−13 h。氨基乙酸、尿素、草酰乙酸、硝酸钠、酵母粉、蛋白胨促进芽管末端膨大形成椭圆形的附着胞(图 1D−G),牛肉膏、硫酸铵、硝酸铵及对照不能形成附着胞(图 1H);48 h形成菌落,对菌落形成影响最大的是蛋白胨,为40.03%,其次是硝酸钠、氨基乙酸、尿素、草酰乙酸,酵母粉、牛肉膏、硫酸铵、硝酸铵及对照始终未形成菌落。

表 3 氮源对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响 Table 3 Effects of nitrogen source on ascospore germination of P. medicaginis
氮源种类
Types of nitrogen source
子囊孢子萌发率
Germination rate of ascospores (%)
芽管长度
Length of bud tube (μm)
附着胞形成率
Formation rate of appressorium (%)
菌落大小
Colony size
附着胞特征
Characteristics of appressorium
长度
Length (μm)
宽度
Width (μm)
对照
CK
18.55±1.01b 6.61±0.33d 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
氨基乙酸
Aminoacetic acid
64.47±0.77f 15.17±2.31c 10.44±0.50b 27.54±0.55d 26.50±0.44c 圆形
Circular
酵母粉
Yeast powder
88.39±0.98i 20.33±1.45b 13.33±0.70c 0.00±0.00a 0.00±0.00a 圆形
Circular
尿素
Urea
35.69±0.18d 22.02±2.21b 26.71±0.42e 19.97±0.25c 19.57±1.05b 椭圆形
Oval
牛肉膏
Beef extract
58.56±0.34e 18.92±3.29bc 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
草酰乙酸
Acetoacetic acid
6.88±0.92a 18.01±2.59bc 20.52±0.47d 18.03±0.27b 17.60±1.10b 椭圆形
Oval
硫酸铵
Ammonium sulphate
17.64±0.24b 20.46±3.07b 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
蛋白胨
Peptone
66.46±0.67g 21.53±3.53b 20.26±0.24d 40.03±0.38f 39.34±0.50d 椭圆形
Oval
硝酸铵
Ammonium nitrate
22.87±0.61c 27.98±2.65a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
硝酸钠
Sodium nitrate
86.95±0.74h 20.26±2.91b 19.41±0.46d 32.82±0.41e 29.28±0.69c 椭圆形
Oval
注:表中各数据为每个处理的平均值±标准误;列中不同小写字母表示每个因素各水平间差异达显著水平(P < 0.05);−:该条件下未见附着胞形成.
Note: All data are the mean value of each treatment±standard error; Different lowercase letters denote significant difference (P < 0.05) in each column; −: no adherent cell is formed under this condition.
2.3 P. medicaginis子囊孢子萌发与Ca2+/CaM信号途径的相关性研究

2.3.1 Ca2+P. medicaginis子囊孢子萌发的影响

表 4可知,外源CaCl2显著影响P. medicaginis子囊孢子的萌发率、芽管长度、附着胞、菌落的形成,当CaCl2浓度在0.1−10.0 mmol/L范围内,子囊孢子萌发率、芽管长度、附着胞、菌落形成达到最大,分别为77.35%、30.27 μm、66.67%、75.00%,可见子囊孢子萌发产生的芽管基部略膨大,芽管顶端膨大形成椭圆形和近圆形的附着胞(图 2),以0.1−1.0 mmol/L形成的近圆形附着胞最多,达到60%以上。但当Ca2+浓度增加至100 mmol/L,附着胞形成被抑制,萌发率、芽管长度等指标差异不大,苯胺蓝染色发现(图 2E),子囊孢子内的遗传物质随着芽管生长转移至附着胞内,孢子呈扁平状,表明遗传物质控制子囊孢子发育并转移至附着胞满足其侵染需要。

表 4 外源Ca2+P. medicaginis子囊孢子萌发的影响 Table 4 Effects of exogenous Ca2+ on ascospore germination of P. medicaginis
浓度
Concentration(mmol/L)
子囊孢子萌发率
Germination rate of ascospores (%)
芽管长度
Length of bud tube (μm)
附着胞形成率
Formation rate of appressorium (%)
菌落大小
Colony size
附着胞特征
Characteristics of appressorium
长度
Length (μm)
宽度
Width (μm)
CK 18.55±1.01a 6.61±0.33a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
0.1 46.55±0.34b 25.52±4.49b 29.41±0.67b 13.33±0.10b 12.73±0.43b 椭圆形
Oval
1 61.17±0.42c 25.91±3.52c 30.77±0.70c 28.57±0.44c 27.29±0.80c 圆形或椭圆形
Circular or oval
10 77.35±0.16e 30.27±2.81e 66.67±0.15e 75.00±0.39e 74.45±0.79e 圆形或椭圆形
Circular or oval
100 71.31±0.55d 28.17±2.03d 35.71±0.50d 38.46±0.23d 37.31±0.66d 圆形或椭圆形
Circular or oval
注:表中各数据为每个处理的平均值±标准误;列中不同小写字母表示每个因素各水平间差异达显著水平(P < 0.05);−:该条件下未见附着胞形成.
Note: All data are the mean value of each treatment±standard error; Different lowercase letters denote significant difference (P < 0.05) in each column; −: no adherent cell is formed under this condition.

图 2 Ca2+P. medicaginis子囊孢子萌发的影响(400×) Figure 2 The effect of Ca2+ on the ascospores germination of P. medicaginis (400×) Note: A−B: 0.1 mmol/L; C−E: 1 mmol/L; F−G: 10 mmol/L; H−I: 100 mmol/L.

2.3.2 EGTA对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响

表 5可知,Ca2+螯合剂EGTA对P. medicaginis子囊孢子的萌发、芽管长度、附着胞、菌落形成均有显著影响,随着EGTA浓度的增加,子囊孢子萌发率和附着胞的形成被抑制。当EGTA浓度为0.1 mmol/L时,形成椭圆形的附着胞(图 3A);当EGTA浓度大于1 mmol/L时,子囊孢子不能萌发,表明低浓度EGTA对子囊孢子的萌发和附着胞的形成不产生影响,而高浓度EGTA则抑制子囊孢子萌发。

表 5 EGTA对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响 Table 5 Effects of EGTA on ascospore germination of P. medicaginis
浓度
Concentration(mmol/L)
子囊孢子萌发率
Germination rate of ascospores (%)
芽管长度
Length of bud tube(μm)
附着胞形成率
Formation rate of appressorium (%)
菌落大小
Colony size(μm)
附着胞特征
Characteristics of appressorium
CK 18.55±1.01c 6.61±0.33c
0.1 14.94±0.79b 4.51±1.94b
1 0.00±0.00a 0.00±0.00a
10 0.00±0.00a 0.00±0.00a
注:表中各数据为每个处理的平均值±标准误;列中不同小写字母表示每个因素各水平间差异达显著水平(P < 0.05);−:该条件下未见附着胞形成.
Note: All data are the mean value of each treatment±standard error; Different lowercase letters denote significant difference (P < 0.05) in each column; −: no adherent cell is formed under this condition.

图 3 Ca2+调节剂对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响(400×) Figure 3 Effects of Ca2+ regulator on ascospore germination of P. medicaginis (400×) Note: A: EGTA; B: EGTA (10 mmol/L)+A23187 (10 µmol/L); C: Chloropromazine; D−F: Nicardipine.

2.3.3 Ca2++EGTA对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响

表 6可知,随着CaCl2浓度的增加,EGTA的抑制效果会被逐渐解除。EGTA与CaCl2的浓度比为10:1时,子囊孢子的萌发被完全抑制;浓度比为1:1时,子囊孢子萌发率显著高于对照,芽管长度显著低于对照,未形成附着胞和菌落;比例达到1:10时,子囊孢子的萌发率、芽管长度及附着胞的形成率显著提高并形成圆形或椭圆形的附着胞,菌落开始形成。

表 6 EGTA+Ca2+P. medicaginis子囊孢子萌发的影响 Table 6 Effects of interaction of EGTA+Ca2+ on the ascospores germination of P. medicaginis
EGTA:Ca2+(mole ratio) 子囊孢子萌发率
Germination rate of ascospores (%)
芽管长度
Length of bud tube (μm)
附着胞形成率
Formation rate of appressorium (%)
菌落大小
Colony size
附着胞特征
Characteristics of appressorium
长度
Length (μm)
宽度
Width (μm)
CK 18.55±1.01b 6.61±0.33c 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
10:1 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
1:1 19.07±0.06c 5.94±0.67b 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
1:10 75.34±0.36d 28.37±0.42d 59.69±0.58b 76.98±0.23b 79.45±0.72b
注:表中各数据为每个处理的平均值±标准误;列中不同小写字母表示每个因素各水平间差异达显著水平(P < 0.05);−:该条件下未见附着胞形成.
Note: All data are the mean value of each treatment±standard error; Different lowercase letters denote significant difference (P < 0.05) in each column; −: no adherent cell is formed under this condition.

2.3.4 A23187、Chloropromazine、Neomycin、Nicardipine对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响

表 7可知,在EGTA中加入Ca2+载体A23187可以解除EGTA对子囊孢子的抑制作用,子囊孢子萌发率显著增加(图 3B)。CaM拮抗剂Chloropromazine浓度为0.01 mmol/L时,子囊孢子不萌发。通过显微观察发现,24 h可看到子囊孢子周围出现絮状物,48、72 h后絮状物质逐渐增多,72 h用苯胺蓝染色后,孢子和絮状物均被染成蓝色且孢子的染色较深(图 3C)。磷酸脂酶(phospholipase C,PLC)抑制剂Neomycin浓度为0.1 mmol/L时,子囊孢子不萌发且未见溶解。细胞膜Ca2+通道阻断剂Nicardipine浓度为1 mmol/L时子囊孢子不萌发,24 h后通过显微镜观察发现子囊孢子的周围产生颗粒状的囊泡(图 3D),部分孢子呈现腐蚀状(图 3E),苯胺蓝染色后发现油滴结构并未受到Nicardipine的影响(图 3F)。

表 7 外源物质对P. medicaginis子囊孢子萌发的影响 Table 7 Effects of exogenous substances on the ascospores germination of P. medicaginis
外源物种类
Exogenous species
浓度/比例
Concentration (mmol/L)/Proportion
子囊孢子萌发率
Germination rate of ascospores (%)
芽管长度
Length of bud tube (μm)
附着胞形成率
Formation rate of appressorium (%)
菌落大小
Colony size
附着胞特征
Characteristics of appressorium
长度
Length (μm)
宽度
Width (μm)
CK 0 18.55±1.01b 6.61±0.33b 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
EGTA:A23187 10:0.01 20.43±1.36c 7.76±0.58c 45.83±0.11b 7.14±0.16b 6.93±0.42b 圆形或椭圆形
Circular or oval
Chloropromazine 0.01 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
Neomycin 0.1, 1, 10, 100 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
Nicardipine 1 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a 0.00±0.00a
注:表中各数据为每个处理的平均值±标准误;列中不同小写字母表示每个因素各水平间差异达显著水平(P < 0.05);−:该条件下未见附着胞形.
Note: All data are the mean value of each treatment±standard error; Different lowercase letters denote significant difference (P < 0.05) in each column; −: no adherent cell is formed under this condition.
2.4 P. medicaginis子实体显微结构特征

图 4可以看出,叶片上形成的子实体黑褐色,直径为0.2−4.0 mm (图 4A);组织切片观察,子囊盘突破寄主表皮组织半埋生于叶片组织中,子实层由多个子囊和侧丝组成(图 4B);扫描电镜观察发现,未成熟的子囊盘埋生于寄主表皮细胞下(图 4C);成熟后突破寄主表皮结构呈球形状凸起,中间开裂露出内部排列整齐的子囊(图 4D);子囊顶端膨大,无囊盖,孔口呈纵向开裂(图 4E−F)。人工培养菌落灰黑色,直径1−2 mm,高度约2 mm左右,成熟后子囊孢子弹出并发育成菌落(图 4G箭头1),一个子实体大约释放出200个左右的子囊孢子(图 4G箭头2);子囊盘结构完整(图 4H),子囊内含8个子囊孢子(图 4H箭头处),子囊和侧丝基部聚生成柄状(图 4I)。

图 4 P. medicaginis子实体结构特征 Figure 4 Structural characteristics of fruit body of P. medicaginis 注:A−B:苜蓿叶片上子实体及组织切片;C:未成熟子囊盘;D:成熟子囊盘及子囊;E:子囊;F:子囊孔口;G−I:V8培养基上培养的子实体、子囊盘及子囊孢子. EC:表皮细胞;CL:裂口;SW:侧丝;AS:子囊;FB:子实体;RAS:子囊孢子. Note: A−B: Fruiting body and tissue section of alfalfa leaves; C: Immature disc; D: Mature disc and sac; E: Ascus; F: Orifice; G−I: Fruiting bodies, sac and spora spores grown on V8 medium. EC: Epidermal cells; CL: Cleft; SW: Lateral filament; AS: Ascus; FB: Fruiting body; RAS: Sac spores.
2.5 P. medicaginis子实体超微结构特征

扫描电镜发现,子囊孢子由子囊顶端的孔口释放出(图 5A),孢子尾部带有粘性物质(图 5A),弹射出的成对的孢子落在子实体周围(图 5B),子囊裂口处可见溢出的椭圆形子囊孢子(图 5C),子囊孢子饱满,卵圆形,表面光滑或有纹饰(图 5D5E),光滑表面进一步放大发现孢子外壁为凹凸不平(图 5F),分析可能是孢子外层具有膜。透射电镜观察发现,子囊盘发育完整,包括囊基细胞、侧丝、子囊和子囊孢子。囊基细胞发达,内含大量的脂类物质(图 5G);侧丝分布在子囊周围(图 5H);菌丝细胞内有液泡和伏鲁宁体结构(图 5I),细胞核物质密集,胞内充满电子致密度高物质,菌丝壁较厚(图 5J);侧丝内富含线粒体等细胞器(图 5K),子囊孢子细胞核物质密集,核外被脂质膜(图 5L),而菌丝细胞的细胞核未观察到类似结构(图 5M);胞内线粒体、囊泡和脂类物质数量多(图 5N),分布在电子致密度高物质中,子囊孢子细胞壁较厚,内外层不同,外壁颜色较深,向内与细胞质膜方向逐渐变浅(图 5O);子囊内的子囊孢子细胞壁外层被波浪形浅色物质包裹(图 5P),子囊顶端有一类似于凸透镜结构(图 5Q),侧面有部分组织溶解(图 5R),但未观察到孔口结构,分析这个凸透镜结构是子囊孢子释放的孔口,当子囊吸水膨胀后,来自子囊内的压力将孢子挤出。

图 5 P. medicaginis子实体超微结构特征 Figure 5 Ultrastructural characteristics of fruit body of P. medicaginis 注:A:子囊顶端释放的子囊孢子;B−E:子囊孢子;F:子囊孢子外壁;G:子囊、子囊孢子及侧丝;H:侧丝;I:菌丝细胞内液泡及伏鲁宁体结构;J:子囊盘菌丝结构;K:产囊母细胞;L:子囊孢子的细胞核;M:菌丝细胞的细胞核;N:子囊内子囊孢子含有的脂类物质及线粒体;O:子囊孢子细胞壁;P:子囊内的子囊孢子细胞壁;Q:子囊顶部;R:子囊顶端溶解;CW:细胞壁内侧;FL:伏鲁宁体;MI:线粒体;GR:脂类物质;NU:细胞核;VS:泡囊结构. Note: A: Ascospores released from the tip of the ascospore; B−E: Ascospore; F: Outer wall of ascospore; G: Mature ascospores, sac spores and lateral filaments; H: Lateral filament; I: Mycelial cells and voronin body structure; J: Apothecium hyphal structure; K: Blastocyst; L: The nucleus and apex of ascospores; M: Nucleus of mycelium cell; N: Lipids and mitochondria in ascospores; O: Ascospore cell wall; P: Ascus wall and ascus; Q: A top amplification; R: Apical dissolution; CW: Medial cell wall; FL: Voronin body; MI: Mitochondrion; GR: Ascospores oil; NU: Nucleus; VS: Vesicle structure.
3 讨论与结论

P. medicaginis通过有性生殖产生子囊孢子,在条件适宜时子囊孢子萌发侵染苜蓿叶片完成侵染过程,叶片上形成的子囊盘可进行远距离传播扩散,因此,研究子囊孢子的萌发对深入研究P. medicaginis侵染机制具有重要的意义。

附着胞是植物病原真菌侵染寄主的关键结构,直接影响真菌与植物的相关识别,介导病原真菌的侵入过程[21]。前人就附着胞形成机理进行了大量的研究,研究结果为揭示病原菌附着胞形成的生物学意义和侵入机制提供了重要的依据[22-23]。王华荣等[12]研究发现,P. medicaginis侵入寄主不形成附着胞,而是以直接侵入方式侵入寄主,表明该菌侵入寄主可以不形成附着胞等侵染结构即可完成侵染,进而建立侵染关系。本试验研究结果表明,合适的碳、氮源和Ca2+能够诱导子囊孢子形成附着胞,而且Ca2+浓度的稳定对P. medicaginis子囊孢子附着胞的形成是必不可少的,充分说明适宜的环境条件可以诱导P. medicaginis子囊孢子形成附着胞,这一研究结果与杨继余等在榆白涩病病菌上的研究结果[24]相同。

EGTA作为一种金属螯合剂与Ca2+作用形成金属螯合物,从而影响胞内Ca2+的浓度[25],A23187与Ca2+形成的中性复合物进入细胞膜增加了细胞膜对Ca2+的渗透性[26]。本试验研究结果表明,添加Ca2+后EGTA的抑制作用被逐渐解除,Ca2+载体A23187能够诱导附着胞的形成,试验证明钙信号途径参与了P. medicaginis子囊孢子附着胞形成过程的调控。

PLC抑制剂Neomycin能够抑制子囊孢子的萌发,分析原因是Neomycin抑制了GTP激活磷酸脂酶C (PLC)使磷脂酰肌醇-4, 5-二磷酸(PIP2)水解为二脂酰甘油(diacyl glycerol,DAG)和三磷酸肌醇(inositol triphosphate,IP3),进而抑制了IP3诱导胞内钙库对Ca2+的释放[27];Ca2+通道调节Nicardipine和CaM拮抗剂Chloropromazine不仅抑制子囊孢子的萌发,而且导致子囊孢子出现溶解现象,推测溶解可能与细胞凋亡信号途径的启动有关。试验结果表明,钙信号途径参与了P. medicaginis子囊孢子的萌发和附着胞形成过程的调控。

菌丝细胞内丰富的内溶物有助于增加膨压,利于穿透寄主细胞壁[28],而线粒体作为真核生物重要的细胞器,为细胞的代谢过程提供必要的能量基础,在调节钙离子平衡、调控细胞的凋亡过程和代谢物的合成中发挥作用[29-31]。本试验观察发现,P. medicaginis子实体菌丝细胞内不仅存在大量内溶物,而且子囊母细胞和子囊孢子内含有丰富的线粒体,为该菌的生长发育提供了物质和能量基础。

子囊顶端的结构和开口方式不仅是盘菌分类的重要依据,而且决定了孢子的释放机制。观察发现,该菌子囊顶端未见囊盖,子囊孢子通过子囊顶部的孔口释放,研究结果与文献[32]一致,但是我们首次观察发现子囊顶端具有类似凸透镜结构,这种凸透镜结构是子囊孢子释放的孔口。扫描电镜观察发现,子囊盘弹出的子囊孢子多为成对出现,这一现象与前人的研究结果[5, 33]相同,Morgan等[5]的研究表明,子囊孢子成对出现可能是其成功侵染寄主所必需的,单个子囊孢子不利于侵染寄主,内在机制有待于深入研究。该研究结果对揭示子囊孢子的释放机制提供了重要的细胞学事件。

透射电镜观察发现,成熟子囊孢子内脂质含量明显增多,推测脂类物质为该菌的生长发育提供能量物质,分析这与苜蓿叶片富含丰富的蛋白质相关[34]。该菌通过何种途径利用脂类物质完成生活史有待于后续深入研究。

致谢: 本论文中的扫描电镜照片由山东微亚生物科技有限公司拍摄完成,透射电镜照片由宁夏医科大学医学科学技术研究中心电镜室拍摄完成,在此谨表谢意。
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