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文章信息
- 杨定祥, 林巧玲, 卢乃会, 何红, 黄银燕, 黄勤知, 曹永军
- YANG Ding-Xiang, LIN Qiao-Ling, LU Nai-Hui, HE Hong, HUANG Yin-Yan, HUANG Qin-Zhi, CAO Yong-Jun
- 拮抗辣椒疫霉菌海洋细菌菌株SH-27的筛选鉴定及其防病促生作用
- Screening and identification of a marine bacterium strain SH-27 against phytophthora capsici causing pepper phytophthora blight
- 微生物学通报, 2018, 45(1): 54-63
- Microbiology China, 2018, 45(1): 54-63
- DOI: 10.13344/j.microbiol.china.170221
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文章历史
- 收稿日期: 2017-03-16
- 接受日期: 2017-06-14
- 优先数字出版日期(www.cnki.net): 2017-06-27
2. 省级现代农业(热带特色园艺)产业技术研发中心 广东 湛江 524088
2. Guangdong Agricultural Research and Development Center for Horticulture Technology, Zhanjiang, Guangdong 524088, China
由辣椒疫霉(Phytophthora capsici)引起的辣椒疫病是世界各地辣椒种植区普遍发生的一种毁灭性土传病害,该病害传入后可在病区长期存活,难以根治,而且该病害可在辣椒整个生育期发生,导致严重的经济损失[1]。目前辣椒疫病主要采用化学药剂防治,但由于其病原菌可在土壤中长期存活并传播,给化学药剂防治带来很大难度,且病原菌易产生抗药性,同时化学防治还易造成环境污染、药物残留,甚至影响人们身体健康等一系列问题[2]。生物防治,尤其是高效生防菌的筛选利用已成为近年来植物病害防治研究的热点,被认为是比较安全和有效的防控措施。
关于辣椒疫病生防菌株的筛选及防效测定方面国内外已有很多报道[3-8],但这些生防菌株大都来源于陆地上的辣椒根际土壤、辣椒及其他植物体内等。随着陆地资源的不断减少,从中筛选获得对植物病原菌有拮抗作用及产生抗菌活性物质微生物的概率越来越小,因此从海洋环境中获取对植物病害有生防价值的微生物菌株已成为开拓植物病害生物防治资源的一种重要思路。目前已有从海洋中分离筛选生防微生物应用于防治诸如黄瓜枯萎病、番茄晚疫病、大豆根腐病及辣椒青枯病等植物病害的报道[9-11],显示出海洋微生物在植物病害防治中较好的研究及应用价值。
关于海洋微生物应用于辣椒疫病的生物防治目前报道较少,因此,本研究以来自海洋环境的珊瑚、海藻和红树植物桐花树为研究对象,从中分离筛选对辣椒疫霉有较强拮抗作用且对辣椒生长有促生作用的菌株,并鉴定其分类地位,以丰富现有的生防菌种资源库,为进一步开发利用海洋微生物应用于防控辣椒疫病等土传病害奠定基础。
1 材料与方法 1.1 供试材料石珊瑚(Diploria strigosa)和半叶马尾藻(Sargassum hemiphyllum)采自广东湛江硇洲岛海域潮汐带(20°85′N−20°95′N,110°54′E−110°65′E),红树植物桐花树(Aegiceras corniculatum)根、茎、叶均采自广东湛江红树林自然保护区(21°20′N−21°25′N,109°50′E−109°53′E)。
供试病原菌辣椒疫霉(Phytophthora capsici)为本实验室分离保存,并经致病性测定证明其具有较强的致病性。
供试辣椒品种为茂蔬一号,由茂名市茂蔬种业科技有限公司孙启迪总经理惠赠。
1.2 供试培养基珊瑚、海藻共附生海洋细菌和桐花树内生细菌的分离采用海水NA培养基(g/L):牛肉膏5.0,蛋白胨10.0,琼脂20.0,pH 7.5;
疫霉菌培养选用黑麦培养基(g/L):黑麦50.0,琼脂20.0,pH自然;
拮抗作用测定选用PDA培养基(g/L):马铃薯200.0,葡萄糖20.0,琼脂20.0,pH自然;
菌株发酵选用BPY培养基(g/L):牛肉膏5.0,葡萄糖10.0,蛋白胨10.0,酵母粉5.0,氯化钠5.0,pH 7.5;
疫霉菌发酵选用10%的V8培养液(g/L):V8蔬菜汁100.0,CaCO3 1.0,pH自然;
上述培养基灭菌条件均为1×105 Pa灭菌30 min。
1.3 主要试剂和仪器蛋白胨、葡萄糖、牛肉膏、琼脂、酵母粉、氯化钠,北京鼎国生物技术有限公司;V8蔬菜汁(商品名称为Campbelli),美国坎贝尔公司;50%烯酰吗啉可湿性粉剂,德国巴斯夫股份有限公司;PCR扩增反应试剂,日本TaKaRa公司;引物由广州立菲生物有限公司合成。
生化培养箱,上海博迅实业有限公司;立式压力蒸汽灭菌锅,上海申安医疗器械有限公司;全温振荡培养箱,哈尔滨市东联电子技术开发有限公司;PCR仪,美国Bio-Rad公司。
1.4 桐花树内生细菌和珊瑚、海藻共附生海洋细菌的分离桐花树根、茎、叶内生细菌分离方法参照欧雄常等[12]。
珊瑚、海藻共附生海洋细菌的分离:取珊瑚、海藻新鲜采集的样品,分别称取10.0 g用灭菌研磨碾碎后加入装有90 mL无菌海水的三角瓶中,放置于28 ℃摇床内140 r/min振荡30 min。取样做梯度稀释后,涂布在海水NA培养基上,37 ℃培养3−5 d后,根据菌落的颜色和形状筛选出细菌,按常规方法纯化保存,供测试鉴定。
1.5 拮抗菌株筛选辣椒疫霉菌拮抗菌株筛选采用对峙生长法,参照欧雄常等[12]。
1.6 拮抗菌株抗菌谱测定采用平板对峙法,在PDA平板中央接种一块直径6.0 mm病原菌菌饼,同时挑取待测细菌菌株点接于平板边缘约1.5 cm处,27 ℃黑暗培养5−7 d,测量抑菌半径。每处理重复3次,以接种培养基为空白对照。
1.7 SH-27菌株对室内盆栽辣椒促生作用的测定在装有灭菌土的花盆(Ф=20 cm)中移植培育的辣椒苗(每盆6株),当辣椒苗出现第6片真叶时,取30 mL SH-27菌株发酵液(BPY培养基,28 ℃、180 r/min振荡培养18−24 h,菌液浓度为1.0×108 CFU/mL)均匀浇灌各盆根围土壤,对照分别浇灌30 mL的空白BPY培养基和无菌水,每处理5盆,3次重复。处理后20 d时参照文献[11]取样测定辣椒根长、株高、茎粗、鲜重、干重,计算促生增幅。其中,株高为根茎部到顶部之间的长度,用直尺测量;茎粗为子叶下部2/3处的茎粗度,用游标卡尺测定。
1.8 SH-27菌株对室内盆栽辣椒疫病的防效测定在装有灭菌土的花盆(Ф=20 cm)中移植培育的辣椒苗(每盆6株),当辣椒苗出现第6片真叶时,取SH-27菌株发酵液30 mL (培养条件同上)均匀浇灌各盆根围土壤,24 h后每盆浇灌接种20 mL辣椒疫霉菌发酵液(10% V8培养基,28 ℃、100 r/min振荡培养96 h)于辣椒苗根部(接种前伤根处理)。以30 mL空白BPY培养基和无菌水灌根处理,24 h后接种辣椒疫霉菌发酵液为阴性对照,以30 mL 50%烯酰吗啉可湿性粉剂1 000倍液均匀喷施于辣椒植株靠近地面的茎基部,24 h后接种辣椒疫霉菌发酵液为阳性对照。28 ℃下保湿培养,每处理5盆,3次重复。分别于接种后4、6、9 d调查发病情况,辣椒苗期疫病病情分级标准见参考文献[13],病情指数、防治效果计算公式见参考文献[14]。
1.9 SH-27菌株鉴定 1.9.1 菌体形态、特征观察及生理生化指标测定参照《常见细菌系统鉴定手册》[15]进行。
1.9.2 菌株16S rRNA基因和gyrA基因序列分析采用CTAB法[16]提取菌株基因组DNA,以27F (5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)和1504R (5′-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA-3′)为上、下游引物扩增16S rRNA基因序列;gyrA基因序列扩增引物为gyrA-F (5′-CAGTCAGGAAATGCGTACGTCCTT-3′)和gyrA-R (5′-CAAGGTAATGCTCCAGGCATTGC T-3′)。PCR扩增体系(25 µL):模板DNA (约50.0 mg/mL) 1.0 µL,上下游引物(10 µmol/L)各2.0 µL,10×PCR buffer 2.5 µL,dNTPs (2.5 mmol) 2.0 µL,Taq酶(5 U/µL) 0.2 µL,ddH2O补足至25 µL。扩增条件:95 ℃ 5 min;94 ℃ 1 min,53 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min 40 s,30循环;72 ℃ 10 min。扩增产物用1%琼脂糖凝胶电泳检测,其中16S rRNA和gyrA基因序列分别采用PCR产物双向直接测序方法测序,测序由生工生物工程(上海)股份有限公司完成,所测得的16S rRNA和gyrA基因序列分别与GenBank数据库中已知序列进行BLAST比对分析,用ClustalX软件和MEGA 5.0构建系统发育树。
1.10 数据处理所测数据采用Excel 2003软件绘图,用SPSS 17.0软件进行数据统计分析。
2 结果与分析 2.1 海洋细菌分离结果经平板稀释涂布实验,根据平板上长出菌落的形态、颜色、大小等特征挑取不同的单菌落进行划线纯化培养,对于形态、颜色基本一致的菌株,从中挑选出一株进行保存。共分离得到海洋细菌142株,其中桐花树内生可培养细菌62株,海藻、珊瑚共附生可培养细菌各40株。按常规方法纯化后保存于海水NA斜面,4 ℃存放,以备后续实验使用。
2.2 拮抗菌株筛选以辣椒疫霉为指示菌,从供试的142株细菌中获得32株对辣椒疫霉有拮抗作用的菌株,其中珊瑚共附生细菌2株,海藻共附生细菌15株,桐花树内生细菌15株。对上述表现有拮抗作用的32株菌进行复筛,获得11株对辣椒疫霉具有较强拮抗活性的菌株,其抑菌带宽达5.51 mm−11.83 mm (表 1)。其中以来自珊瑚的SH-27菌株拮抗作用最强,对辣椒疫霉菌的抑菌圈半径达11.83 mm。
菌株 Strains |
菌株来源 Resource |
抑菌带宽 Inhibition zones (mm) |
HS-6 | 桐花树Aegiceras corniculatum | 5.54±0.26 |
HS-13 | 桐花树Aegiceras corniculatum | 5.86±0.09 |
HS-14 | 桐花树Aegiceras corniculatum | 6.62±0.12 |
HS-22 | 桐花树Aegiceras corniculatum | 5.51±0.15 |
HS-30 | 桐花树Aegiceras corniculatum | 6.07±0.16 |
HS-38 | 桐花树Aegiceras corniculatum | 6.80±0.21 |
HS-42 | 桐花树Aegiceras corniculatum | 8.15±0.22 |
HZ-6 | 半叶马尾藻Sargassum hemiphyllum | 5.52±0.23 |
HZ-14 | 半叶马尾藻Sargassum hemiphyllum | − |
HZ-30 | 半叶马尾藻Sargassum hemiphyllum | 6.18±0.12 |
SH-27 | 石珊瑚Diploria strigosa | 11.83±0.11 |
注:−:没有抑菌效果. Note: −: No inhibitory effect. |
进一步对上述11株具有较强拮抗辣椒疫霉活性的海洋细菌进行抗菌谱测定,结果表明(表 2):除HS-13、HS-14、HS-22和HZ-14之外,其余7个菌株对供试大豆疫霉、致病疫霉、芋头疫霉、芦荟疫霉、西瓜枯萎病菌、香蕉枯萎病菌、富贵竹黑曲霉菌、香蕉炭疽菌等病原菌均有不同程度的抑制作用,其中仍以来自珊瑚的SH-27菌株的抑菌作用最强且最稳定,对各供试病原菌的抑菌圈半径均达22 mm以上。
菌株 Strains |
抑菌带宽 Inhibition zones (mm) |
|||||||
大豆疫霉 Phytophthora sojae |
致病疫霉 Phytophthora infestans |
芋头疫霉 Phytophthora colocasiae |
芦荟疫霉 Phytophthora nicotianae |
西瓜枯萎病菌 Fusarium. oxysporum f. sp. niveum |
香蕉枯萎病菌 Fusarium. oxysporum f. sp. cubense |
富贵竹黑曲霉 Aspergillus niger |
香蕉炭疽菌 Calletotrichum musae |
|
HS-6 | 24.11±0.15 | 26.28±0.22 | 21.95±0.16 | 21.61±0.21 | 20.03±0.12 | 23.01±0.26 | 21.19±0.25 | 24.79±0.19 |
HS-13 | 26.62±0.17 | 17.22±0.23 | 10.26±0.06 | 21.12±0.23 | 21.59±0.25 | 20.31±0.09 | − | 24.10±0.22 |
HS-14 | 24.41±0.13 | 24.01±0.21 | 22.98±0.22 | − | − | 20.68±0.12 | − | 16.94±0.09 |
HS-22 | 22.29±0.12 | 20.54±0.15 | 22.26±0.26 | − | 21.67±0.19 | 21.38±0.15 | − | 12.24±0.06 |
HS-30 | 24.06±0.16 | 23.32±0.12 | 20.65±0.23 | 21.34±0.12 | 22.12±0.21 | 21.54±0.16 | 21.06±0.19 | 24.38±0.25 |
HS-38 | 24.41±0.15 | 22.34±0.10 | 18.65±0.09 | 20.95±0.22 | 21.34±0.26 | 22.65±0.21 | 20.51±0.26 | 24.16±0.15 |
HS-42 | 23.25±0.25 | 20.13±0.19 | 24.33±0.15 | 20.32±0.21 | 20.56±0.22 | 22.98±0.22 | 20.00±0.10 | 24.65±0.26 |
HZ-6 | 24.40±0.23 | 19.12±0.06 | 19.92±0.11 | 21.06±0.25 | 16.68±0.10 | 22.02±0.23 | 20.64±0.23 | 22.35±0.11 |
HZ-14 | 19.67±0.11 | 19.88±0.11 | 25.54±0.19 | 20.38±0.10 | 17.42±0.09 | 22.34±0.15 | − | 21.36±0.16 |
HZ-30 | 23.23±0.14 | 26.36±0.25 | 18.77±0.06 | 22.85±0.15 | 22.62±0.11 | 22.45±0.12 | 21.62±0.15 | 25.03±0.19 |
SH-27 | 27.17±0.15 | 28.26±0.22 | 27.98±0.25 | 23.64±0.26 | 23.25±0.23 | 23.36±0.11 | 22.31±0.21 | 25.64±0.17 |
CK | − | − | − | − | − | − | − | − |
注:−:没有抑菌效果. Note: −: No inhibitory effect. |
综合比较表 1、2的海洋细菌菌株拮抗效果可以看出,来自珊瑚的SH-27菌株不仅对辣椒疫霉菌具有较强的抑制作用,且抑菌谱广,抑菌效果最稳定,因此对该菌株进行下一步的辣椒盆栽防病促生作用测定,并鉴定其分类地位。
2.4 SH-27菌株对室内盆栽辣椒促生作用的测定结果室内盆栽测定结果表明(表 3),SH-27菌株发酵液灌根处理对辣椒生长具有显著的促进作用。菌株发酵液处理后,辣椒植株的根长、株高、茎粗、鲜重、干重分别为30.90 cm、24.60 cm、4.03 mm、9.95 g/株、1.03 g/株,比空白BPY培养基对照增加31.71%、32.05%、17.15%、49.85%、51.47%,比无菌水对照增加48.99%、40.97%、34.33%、72.15%、56.06%。
处理 Treatment |
根长 Root length (cm) |
株高 Stem length (cm) |
茎粗 Stem diameter (mm) |
鲜重 Fresh weight (g) |
干重 Dry weight (g) |
SH-27 fermentation broth | 30.90±0.47c | 24.60±0.10c | 4.03±0.01c | 9.95±0.27c | 1.03±0.05c |
BPY (CK1) | 23.46±0.14b | 18.63±0.13b | 3.44±0.05b | 6.64±0.85b | 0.68±0.04a |
Water (CK2) | 20.74±0.33a | 17.45±0.05a | 3.00±0.01a | 5.78±0.58a | 0.66±0.06a |
注:数据后小写字母分别表示处理间存在P < 0.05水平显著性差异. Note: Lowercase letters are significantly at 0.05 probability level of the different treatments. |
SH-27菌株对室内盆栽辣椒疫病防治测定结果表明(表 4),菌株发酵液处理对辣椒疫病具有明显的防治效果。与对照无菌水处理和空白BPY培养基处理相比,菌株发酵液灌根处理能明显降低辣椒苗疫病的病情指数,接种4、6和9 d的防效分别为70.81%、66.55%和48.20%,但低于同期对照化学药剂50%烯酰吗啉可湿性粉剂1 000倍液处理。观察发现接种空白BPY培养基处理不但没有防治作用,反而对辣椒疫病的发生具有一定的促进作用,可能是由于培养基富含高营养成分,促进了辣椒疫霉菌的生长。这进一步说明菌株发酵液处理对室内盆栽辣椒疫病的防治效果是菌株作用所致。
处理 Treatments |
4 d | 6 d | 9 d | |||||
病情指数 Disease index |
防效 Control efficacy (%) |
病情指数 Disease index |
防效 Control efficacy (%) |
病情指数 Disease index |
防效 Control efficacy (%) |
|||
SH-27 fermentation broth | 9.00 | 70.81 | 19.40 | 66.55 | 52.10 | 48.20 | ||
Dimethomorph 50% WP | 5.30 | 93.39 | 12.96 | 87.04 | 14.64 | 73.42 | ||
BPY (CK1) | 27.24 | − | 56.55 | − | 97.55 | − | ||
Water (CK2) | 27.55 | − | 57.23 | − | 100.00 | − | ||
注:−:没有抑菌效果. Note: −: No inhibitory effect. |
形态观察发现(图 1),SH-27菌株在NA平板上菌落圆形,乳白色,随着培养时间的延长,菌落边缘加厚,表面褶皱、干燥,边缘突起;革兰氏染色阳性;菌体杆状,周生鞭毛,产芽孢,芽孢圆形或椭圆形,在菌体中央或一端形成。
2.6.2 生理生化特性生理生化测定结果表明(表 5):菌株SH-27为兼性厌氧菌,能水解淀粉,可利用葡萄糖、蔗糖、甘露醇、乳糖,不能利用木糖、阿拉伯糖,不产生H2S;生长温度范围为15−45 ℃,在pH 5.7的培养基中可以生长,具有耐盐性,可以在8.0%的NaCl培养基中生长。参照文献[15],该菌株与解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliquefaciens)的特征基本相似。
测定指标 Index |
菌株特征 Characteristics |
|
硝酸盐还原Nitrate reduction | - | |
丙二酸利用Malonic acid | - | |
H2S | - | |
吲哚产生Benzpyrole | - | |
甲基红Methyl red | - | |
V-P | + | |
淀粉水解Starch hydrolysis | + | |
纤维素水解Lignocellulose hydrolyzed | - | |
七叶灵水解Esculin | + | |
明胶液化Gelatin liquefaction | + | |
接触酶Catalase | + | |
氧化酶Oxidase | - | |
色氨酸脱氨酶Tryptophan deaminase | - | |
苯丙氨酸脱氨酶Phenylalanine deaminase | - | |
葡萄糖产气Glucose produces gas | - | |
葡萄糖产酸Glucose produces acid | + | |
厌氧生长Anaerobic growth | + | |
NaCl (%) | 2 | + |
5 | + | |
8 | + | |
10 | - | |
生长温度Growth temperature (℃) | 10 | - |
40 | + | |
50 | - | |
生长pH 5.7 Growth in pH 5.7 | + | |
柠檬酸盐利用Citrate utilization | - | |
葡萄糖Glucose | + | |
蔗糖Sucrose | + | |
果糖Laevulose | + | |
麦芽糖Maltose | + | |
D-半乳糖D-galactose | - | |
D-甘露糖D-mannose | + | |
D-木糖D-xylose | - | |
L-山梨糖L-sorbose | + | |
L-阿拉伯糖L-arabinose | - | |
棉子糖Raffinose | + | |
肌醇Inositol | + | |
肌酸Creatin | - | |
山梨酸Sorbic acid | - | |
淀粉Starch | + | |
甘油Glycerinum | + | |
NH4Cl | + | |
(NH4)2SO4 | + | |
(NH4)2HPO4 | + | |
NH4NO3 | + | |
NaNO3 | + | |
尿素Carbamide | + | |
DL-天安冬氨酸DL-tianan aspartic acid | + | |
注:+:阳性反应;–:阴性反应. Note: +: Positive; –: Negative. |
生防菌株SH-27的16S rRNA基因片段大小为1 422 bp (GenBank登录号:KF984321),用BLAST软件进行相似性比较,通过与GenBank中的核苷酸数据进行对比分析,菌株SH-27与解淀粉芽孢杆菌(登录号:JN999865)一致性高达99.9%。
生防菌株SH-27的gyrA基因片段大小为935 bp (GenBank登录号:KX826083),用BLAST软件进行相似性比较,通过与GenBank中的核苷酸数据进行对比分析,菌株SH-27与解淀粉芽孢杆菌(登录号:KC462185)一致性也高达99.9%。
用MEGA 5.0软件按Neighbor-Joining法分别构建系统发育树(图 2、3)。由图 2、3可见,SH-27菌株与Bacillus amyloliquefacien同处一支,遗传进化距离最近。综合菌株形态特征、生理生化测试结果与16S rRNA和gyrA基因序列分析,将SH-27菌株鉴定为解淀粉芽孢杆菌(B. amyloliquefaciens)。
3 讨论与结论
目前报道的植物病害生防细菌主要有芽孢杆菌、假单胞菌及沙雷氏菌等,其中芽孢杆菌因可产芽孢、抗逆性强、营养要求简单、繁殖快、大多可分泌产生抗菌活性物质等优点而成为研究报道最多的生防细菌种类。然而芽孢杆菌中又以枯草芽孢杆菌(B. subtilis)和解淀粉芽孢杆菌(B. amyloliquefaciens)居多。由于枯草芽孢杆菌和解淀粉芽孢杆菌有基本相同或相似的形态和生理生化特性,而且其16S rRNA基因序列一致性也较高,因此在鉴定中仅根据形态、生理生化特性及16S rRNA基因序列往往难以区分这两个种[6]。由于gyrA基因可以编码DNA解旋酶A亚基,具有较高的遗传特异性,所以扩增gyrA基因序列可有效区分和鉴定枯草芽胞杆菌组中的近缘种,弥补16S rRNA基因的不足[17]。因此,16S rRNA和gyrA基因序列分析相结合能对分离菌株进行更准确的鉴定。本研究通过测定SH-27菌株的16S rRNA和gyrA基因序列发现,SH-27菌株与解淀粉芽孢杆菌(登录号:JN999865)的16S rRNA基因序列一致性高达99.9%,与解淀粉芽孢杆菌(登录号:KC462185)的gyrA基因序列一致性也高达99.9%;同时结合菌株形态特征、生理生化特性测定结果,将SH-27菌株鉴定为解淀粉芽孢杆菌(B. Amyloliquefaciens)。该研究结果可为相关菌株鉴定提供借鉴参考。
目前已从陆源分离筛选到大量对辣椒疫霉具有较强拮抗作用,同时对辣椒疫病具有较好生防效果的微生物菌株,但海洋微生物及其代谢产物用于辣椒疫病生物防治的报道目前尚不多见。据文献报道,2007年暴增海等[18]从连岛死鱼样品分离的L1-9菌株对辣椒疫霉病菌、玉米小斑病菌、小麦赤腐霉病菌等10种植物病原真菌都有明显的抑制作用,对小麦赤腐霉病菌的抑制作用最为明显。2008年柳凤等[19]从广东湛江海域的海水、海藻和红树体内分离海洋细菌,其中有27.46%的菌株对辣椒疫霉具有抑制作用,以来自红海榄叶片的RS261和来自海水的SW312这2个菌株胞外分泌物的抑菌作用最强,其防病效果也相对最好。2009年欧雄常等[12]结合形态、生理生化特征和分子生物学等测定分析,进一步将RS261菌株初步鉴定为解淀粉芽孢杆菌。2009−2010年柳凤等[20-21]通过研究证明RS261菌株可通过叶部和根系侵入,在辣椒体内定殖时间长达26 d以上,且对辣椒有明显的促生作用;该菌株对辣椒疫霉菌丝生长和游动孢子囊形成也有明显的抑制作用,并能引导辣椒体内防御性酶活性产生变化。2010年张兴锋等[22]从422株红树内生细菌中筛选到一株对青枯雷尔氏菌、溶藻弧菌、辣椒疫霉菌、香蕉枯萎病菌等动植物病原细菌和真菌均具有较强拮抗作用的海洋细菌CⅢ-1菌株,并鉴定该菌株为解淀粉芽孢杆菌。2011年何培青等[23]从南极海泥中分离到一株芽孢杆菌Bacillus sp. 107,研究发现该菌的发酵上清液对茄交链孢菌、立枯丝核菌、辣椒疫霉菌等植物病原真菌有强抑制作用。2015年Tareq等[24]从来源于海底沉积物的海洋细菌菌株109GGC020发酵液提取出2种环状脂肽类化合物,该化合物能抑制辣椒疫霉菌游动孢子的活性,有望开发为辣椒疫霉的杀菌剂。本研究发现分离自珊瑚的SH-27菌株发酵液对盆栽辣椒有良好的促生及防病作用,显示出该菌株具有良好的开发利用潜力。
从珊瑚共附生海洋细菌中分离筛选对辣椒疫病有较好防治效果并对辣椒生长有良好促生作用的生防菌株,在国内外尚属首次报道。珊瑚礁生态系统是海洋中重要的生态系统之一,具有很高的生物多样性和重要的经济价值[25]。微生物是珊瑚生态系统中数量最多的一类生物,但由于礁栖微生物种群数量庞大,目前研究和鉴定过的微生物尚不足其总量的1%[26],意味着珊瑚共附生微生物资源尚有极大潜力等待人类挖掘。本研究中来源于珊瑚的生防菌株SH-27的筛选鉴定对进一步拓宽海洋微生物资源研究具有重要的意义,为海洋微生物应用于生物菌肥和生物农药的研发提供了优质的菌株资源,但有关该菌株田间防病效果及防病机理等尚有待进一步研究。
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