微生物学通报  2016, Vol. 43 Issue (7): 1590-1597

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黄翔峰, 林兰娜, 彭开铭
HUANG Xiang-Feng, LIN Lan-Na, PENG Kai-Ming
表面自由能在环境微生物粘附研究中的应用进展
Progress on the application of surface free energy to the adhesion of environmental microorganisms
微生物学通报, 2016, 43(7): 1590-1597
Microbiology China, 2016, 43(7): 1590-1597
10.13344/j.microbiol.china.150581

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收稿日期: 2015-07-31
接受日期: 2015-12-04
优先数字出版日期(www.cnki.net): 2016-01-07
表面自由能在环境微生物粘附研究中的应用进展
黄翔峰, 林兰娜, 彭开铭     
同济大学环境科学与工程学院 污染控制与资源化研究国家重点实验室 上海 200092
摘要: 在环境领域中,对微生物粘附的利用和控制越来越受到研究者的关注。其中,微生物的表面自由能作为细胞表面重要特性,对微生物的粘附行为有重要影响。本文总结了微生物粘附过程中涉及的热动力学理论、Derjaguin-Landau-Verwey-Overbeek (DLVO)以及扩展DLVO理论,阐述了微生物表面自由能在该过程的重要性。基于此,介绍了接触角表征微生物表面自由能的方法体系及影响因素;分析了微生物表面自由能及其分量的分布特征、与物质组成的关系。最后根据被粘附对象的不同,总结了环境微生物表面自由能在固体基质、液体基质或者微生物相互之间粘附中的应用;指出未来研究发展的方向应关注环境微生物表面自由能的标准化表征及其在复杂环境中的应用。
关键词: 环境微生物    表面自由能    生物粘附    DLVO理论    
Progress on the application of surface free energy to the adhesion of environmental microorganisms
HUANG Xiang-Feng, LIN Lan-Na, PENG Kai-Ming     
College of Environmental Science and Engineering, State Key Laboratory of Pollution Control and Resource Reuse, Tongji University, Shanghai 200092, China
Received: July 31, 2015; Accepted: December 04, 2015; Published online (www.cnki.net): January 07, 2016
Foundation item: National Natural Science Foundation of China (No. 51478326)
Corresponding author: PENG Kai-Ming: Tel: 86-21-65982399; E-mail: kai878@sina.com
Abstract: The use and control of microbial adhesion in environmental area have been received greater attention from researchers. Microbial cell surface free energy, as one of cell surface properties, has important influence on adhesion behavior of microorganisms. This article highlights the role of surface free energy on microbial adhesion through thermodynamic approach, Derjaguin-Landau-Verwey- Overbeek (DLVO) theory and extended DLVO (XDLVO). Based on these theories, the characterization method of microbial surface free energy calculated from contact angle and its influencing factors are introduced. Besides, it analyses the distribution feature of microbial surface free energy, its components and its relationship with substances composition. Finally, this review summarizes the application of surface free energy in environmental microorganisms’ adhesion, including adhesion on solid substrates, liquid substrates and adhesion between microorganisms according to adhesion substrates. Feature research should pay more attention to the standard characterization method of environmental microorganisms’ surface free energy and its application in complex circumstances.
Key words: Environmental microorganisms    Surface free energy    Microbial adhesion    DLVO theory    

在环境领域中,微生物粘附可强化废水生物处理,利于微生物对土壤中有害物质的降解,发挥其有益的一面[1, 2];但同时,微生物粘附也产生了很多环境问题,如膜反应器的微生物污染与腐蚀[3]、供水管道的生物污染与堵塞[4]等。微生物粘附的研究具有两个相反的目标:强化促进微生物粘附和预防控制微生物粘附。因此,对微生物粘附机制的研究显得尤为必要。微生物粘附主要受到微生物、环境介质、基质等方面的影响,其中微生物作为粘附行为的主体在该过程中的作用比较显著。早期,对微生物粘附机制的研究主要局限在探究微生物表面性质与微生物粘附效果的相关性,如细胞表面疏水性和带电性与微生物粘附量的关系[5]。随着热动力学理论和胶体理论的引入,研究者从微生物表面自由能出发研究微生物与基质间的作用力,从而深入揭示微生物粘附的机制。在粘附理论的研究中微生物的表面自由能作为细胞表面特性对粘附行为有着重要作用。因此,基于粘附理论考察表面自由能在环境领域微生物粘附的研究越来越受到关注。

1 微生物粘附的理论

微生物粘附的理论基础主要包括:热动力学理论(Lifshitz-van der Waals/Lewis acid-base,LW-AB)[6]和胶体理论(Derjaguin-Landau-Verwey-Overbeek,DLVO)[7]、Extended Derjaguin-Landau-Verwey- Overbeek (XDLVO)[8]

LW-AB法是基于微生物、环境介质、基质三者相互作用的界面作用能计算粘附过程的吉布斯自由能变(ΔGLW-AB),如公式(1)所示:

$\Delta {{G}^{\text{LW-AB}}}={{\gamma }_{\text{bs}}}-{{\gamma }_{\text{bl}}}-{{\gamma }_{\text{sl}}}$ (1)

其中,γbsγblγsl分别代表微生物-基质、微生物-环境介质、基质-环境介质的界面自由能。当ΔGLW-AB<0,说明在热动力学理论上微生物可以粘附在基质上,反之则不可以发生粘附[4, 9]。虽然该理论并没有考虑微生物与基质的接触距离对微生物粘附的影响,但其阐明了疏水性的微生物易粘附在疏水基质上,而亲水性微生物易粘附在亲水基质上的普遍现象,是简单判断微生物是否能够发生粘附的有效手段。

由于大多数微生物的直径为0.5 μm−2.0 μm[10],接近胶体颗粒的尺寸,可以采用胶体稳定理论DLVO来分析微生物粘附过程。传统的DLVO理论认为微生物的粘附过程受微生物与基质间范德华作用力和静电作用力(Electrical double layer,EL)的相互制约。当微生物与基质之间的距离相近时,范德华力起主导作用,促进微生物的粘附;当两者相距较远时,范德华力迅速下降,此时静电力是控制微生物粘附的主导力。但对于疏水性粒子,传统的DLVO理论并不能很好地解释粒子在水合作用下与基质间的疏水作用力[8]。在水媒介质中,微生物与基质间疏水性作用的主要驱动力是酸碱作用力,其是以介质中电子受体和电子供体两部分的相互作用为基础。基于此,van Oss提出了XDLVO理论[8](图 1),将胶体颗粒之间相互作用力分为非极性的利弗席兹-范德华力(Lifshitz-van der Waals interaction,LW)、极性的路易斯酸碱电子作用力(Lewis acid-base interaction,AB)以及静电作用力(EL),如公式(2)所示。XDLVO理论是发展较为完善的理论,它结合了LW-AB法和DLVO理论,可以较好地判断微生物、基质的表面性质和介质的离子强度对微生物粘附的影响。

图 1  微生物在基质上的粘附过程 Figure 1  Process of microbial adhesion on substrates

$\Delta {{G}^{\text{XDLVO}}}=\Delta {{G}^{\text{LW}}}+\Delta {{G}^{\text{AB}}}+\Delta {{G}^{\text{EL}}}$ (2)

在利用粘附理论研究微生物粘附机制中,对微生物与基质间相互作用参数的准确估算是关键。静电作用力是根据微生物和基质的电势,利用Smoluchowsk方程计算得到[10];而酸碱作用力、范德华力以及界面作用自由能则是要根据微生物和基质的表面自由能来计算。微生物作为粘附过程中的主体,其表面自由能和带电性对于粘附过程具有显著影响。大部分微生物带负电,对粘附的影响相对稳定;而微生物表面自由能的差异性是影响微生物粘附结果的来源。

2 微生物的表面自由能

微生物的表面自由能是微生物表面分子间作用力的体现,反映了微生物的固有本质特征。对微生物表面自由能的表征、分布特征及其物质基础的深入研究有助于揭示影响微生物粘附的根源。

2.1 微生物表面自由能的表征

根据van Oss理论,微生物的表面自由能可以分为非极性分量(γbLW)和极性分量(γbAB),其中,γbAB又分为电子受体分量(γb+)和电子供体分量(γb-),各分量关系如公式(3)所示:

${{\gamma }_{\text{b}}}=\gamma _{\text{b}}^{\text{LW}}+\gamma _{\text{b}}^{\text{AB}}=\gamma _{\text{b}}^{\text{LW}}+2\sqrt{\gamma _{\text{b}}^{\text{+}}\gamma _{\text{b}}^{-}}$ (3)

目前,用于微生物表面自由能的测定方法有接触角法[11]、反气相色谱法[12]以及分光光度法[13]。其中,接触角法操作方法简便,有一定的理论基础,被广泛应用于表面自由能的表征。该方法是基于Young平衡方程与van Oss理论建立的,采用接触角计算微生物的表面自由能,如公式(4)所示:

${{\gamma }_{\text{l}}}\left( 1+\cos \theta \right)=2(\sqrt{\gamma _{\text{l}}^{\text{LW}}\gamma _{\text{b}}^{\text{LW}}}\text{+}\sqrt{\gamma _{\text{l}}^{\text{+}}\gamma _{\text{b}}^{-}}\text{+}\sqrt{\gamma _{\text{l}}^{-}\gamma _{\text{b}}^{+}})$ (4)

其中下标l表示探针液体;θ表示探针液体对微生物的接触角。通过测定3种不同的探针液滴在微生物表面的接触角计算出微生物表面自由能的3个分量γbLWγb+γb-,从而得到微生物的表面自由能。探针液体一般包括两种极性和一种非极性液体[14]。其中,水常作为极性探针液体,甲酰胺、甘油和乙二醇也是极性探针液体的选择之一;对于非极性探针液体,主要采用1-溴代萘和二碘甲烷。各个探针液体的表面自由能及其分量如表 1所示。其中,水、甲酰胺和二碘甲烷常用于测定微生物的表面自由能。

表 1 常用探针液体的表面张力成分 Table 1 surface tension of some diagnostic liquids (20 ℃, mJ/m2)[14]
类别 Category γl Surface free energy γlLW apolar component γlAB Polar component γl+ Electron acceptor parameter γl- Electron donor parameter
水 Water 72.8 21.8 51.0 25.50 25.5
甲酰胺 Formamide 58.0 39.0 19.0 2.28 39.6
甘油 Glycerol 64.0 34.0 30.0 3.92 57.4
乙二醇 Ethylene glycol 48.3 29.3 19.0 1.92 47.0
1-溴代萘 1-bromonaphthalene 44.4 44.4 0 0 0
二碘甲烷 Diiodomethane 50.8 50.8 0 0 0

微生物对探针液体接触角的准确测定是计算表面自由能的前提。在微生物接触角的测定过程中,首先需要将分散的微生物细胞制备成均匀稳定的“细胞层”,即将一定浓度的微生物细胞悬液在孔径为0.45 μm的醋酸纤维素膜上进行负压过滤[15],控制细胞层密度为108个/mm2或厚度在800−900层左右[16]。其次,将制备得到的细胞层膜置于有盖琼脂平板上一段时间使其保持相同的湿度。经过一定的干燥时间后,利用接触角仪测定3种不同探针液滴在细胞层上某时刻的接触角。

微生物膜的干燥程度和探针液体在膜上的停留时间是影响接触角准确测定的两个主要影响因素。在细胞层的制备过程中,不同干燥程度的细胞层可能使微生物表面的聚合物和官能团发生重组或者改变[17],影响液滴在细胞层上的存在形态。因此,选取合适的干燥时间和干燥温度使细胞层表面水分蒸发且不影响细胞结合水的存在形式是关键[18]。在接触角测定过程中,探针液滴在细胞层上不同停留时间的接触角值存在一定差异,选择停留时间过短的接触角会因为液滴滴加过程中的弹跳形变而引起误差;但当液滴停留时间过长时,由于探针液滴在细胞层上的渗透和扩散作用,导致接触角的读取结果受到影响[15, 19, 20]。一般来说,液滴在细胞层上停留第2 s对应的接触角相对比较稳定,常被研究者选用[19, 20]

2.2 微生物表面自由能的分布特征

不同微生物的表面自由能分量具有一定的特征范围,对其分布规律的分析有助于揭示微生物表面自由能的差异以及影响微生物粘附过程的关键因素。对环境粘附领域中的52株不同微生物的表面自由能分量进行统计分析(图 2),分别从非极性分量(γbLW)、极性分量(γbAB)考察环境微生物表面自由能的分布特征。

图 2  环境微生物表面自由能各分量(γbLWγbABγb+γb-)的分布 Figure 2  Distribution of different components of environmental microorganisms’ surface free energy (γbLW, γbAB, γb+, γb-)

对于微生物的非极性分量(γbLW),研究者从147株细菌对非极性探针液体二碘甲烷接触角的总结发现其平均值为37°±9.3°,其中95%的二碘甲烷接触角落在36°−72°之间;这表明不同微生物表面的γbLW差异并不大,主要分布在30−40 mJ/m2[16]。环境领域中微生物的非极性分量分布范围也在此范围左右(图 2)[4, 21, 22, 23],如淡水中的藻类γbLW分布在28.3−37.8 mJ/m2[23],饮用水中分离的25株菌株γbLW分布在11.7−36.9 mJ/m2[4]

对于微生物的极性分量(γbAB),微生物对极性探针液体的接触角分布比较分散,水的接触角分布在17°−105°,甲酰胺的接触角分布在10°−91°;对应微生物的γbAB分布范围为0.06−70 mJ/m2,其中超过97%分布在0.06−30 mJ/m2[16]。极性分量中γb+γb-的分布则具有较大差异,γb+的分布范围为0−15 mJ/m2,其中90%集中在1.8×10-5−5 mJ/m2;而γb-分布较为分散,范围为0.03−105 mJ/m2[16]。由此可见,γb-是引起微生物表面自由能差异的最主要体现者。对于大多数微生物而言,γb->γb+(图 2),说明微生物具有路易斯碱的性质,更倾向于电子供体性质,这是因为大气中氧的存在和生物细胞的水合作用使得生物表面呈现出电子供体的性质[9, 24]。一般而言,亲水性微生物的γb-大,γb+较小;疏水性微生物γb-以及γb+均较小[25, 26]。在对疏水性物质降解的环境微生物中,假单胞菌属的γb+分布在0.19−1.29 mJ/m2,而γb-则分布在0.02−56.9 mJ/m2[26, 27, 28, 29, 30];红球菌属的γb+分布在0.13−3.64 mJ/m2γb-则分布在0.56−28.0 mJ/m2[26, 31]。可见,环境微生物表面自由能的分布规律与一般微生物的分布一致(图 2)。

综上所述,微生物的γbLWγb+分布范围较为集中,而γb-分布范围则较为广泛,是反映微生物表面自由能差异的关键分量。

2.3 微生物表面自由能的物质基础研究

由于微生物菌株类型、培养条件、生长周期的差异,微生物表面自由能及其分量的分布特征各异。究其本质,微生物表面自由能的差异主要是因为细胞表面物质组成和官能团的不同[32]

微生物的细胞表面物质,如脂多糖、胞外聚合物、胞外DNA和蛋白质的差异都会影响微生物的表面自由能及其分量。对于表面自由能(γb),Das等[30]研究发现当变异链球菌、铜绿假单胞菌、表皮葡萄球菌吸附最大浓度的胞外DNA后,对水的接触角最大,微生物的表面自由能最低。对于非极性表面自由能(γbLW),van Oss[33]指出由于微生物细胞表面物质组成的差异使得微生物的γbLW主要分布在20 mJ/m2 (如各种碳氢化合物以及脂类)和42 mJ/m2 (如蛋白或糖类)之间。在环境领域中,Ozkan和Berberoglu[23]的研究发现表面含有蛋白质和多糖层的硅藻的γbLW平均值为12.8 mJ/m2;而含有纤维素和多糖复合物的绿藻的γbLW平均值为32.2 mJ/m2。对于极性表面自由能分量(γbAB),Sheng和Yu[34]发现嗜酸红假单胞菌γbAB与单位干细胞产生的胞外聚合物质量呈正相关关系。饮用水中的食酸丛毛单胞菌可以产生不同的表面蛋白质和胞外聚合物[4],因此不同菌株γb+分布范围为0−3.0 mJ/m2γb-则分布在42.1−117.1 mJ/m2。恶臭假单胞菌随着表面脂多糖含量的减少,γb-变小,γb+变大[26]。Chen等[24]发现当枯草芽孢杆菌的芽孢缺少两种主要的蛋白质时,γb-变小,γb+变大。

综上所述,研究者致力于探究微生物表面自由能及其分量与物质之间的关系,但是对于大多数微生物而言,两者具体对应的关系暂未明晰,有待深入的研究,以期为调控微生物粘附提供理论指导。

3 表面自由能在环境领域生物粘附研究中的应用

根据被粘附对象的不同,可将环境微生物的粘附分为微生物在固体基质、液体基质或者微生物相互之间的粘附。

3.1 在固体基质上的粘附

在环境领域中,微生物在固体基质上的粘附体现在生物膜法处理废水和强化微生物对土壤污染的修复等有利的一面;同时,微生物在固体上粘附也体现在膜污染、饮用水输送管道的生物污染等不利的一面。

在生物膜法处理废水中,微生物在固体基质上粘附形成生物膜有利于强化微生物对水中有机物质的降解。Khan等[21]研究硝化菌、亚硝化螺菌、埃希式杆菌属在不同膜材料上的粘附量,研究发现,微生物体表面自由能的大小与粘附速率成正相关,即微生物的表面自由能越大,微生物在膜上的粘附速率越快。Nomura等[35, 36]通过表征产甲烷菌的表面自由能和带电性,采用LW-AB法计算得到微生物在竹炭上粘附的理论值与实际粘附量具有较好的相关性,并指出相对于静电作用粘附过程中微生物的表面自由能对粘附的贡献较大。

微生物在土壤颗粒粘附有利于微生物降解土壤中的污染物质。Chen等[27]通过表征大肠杆菌、荧光假单胞菌和枯草芽孢杆菌的表面自由能,计算得到微生物在硅胶上粘附的ΔGLW-AB与实验所得的沉积系数成负相关,且枯草芽孢杆菌表面自由能最小,ΔGLW-AB最小,沉积系数最大,微生物在基质上的粘附量越多。链球菌属和干酪乳杆菌在石英砂的粘附结果也是如此,ΔGLW-AB越小,实际实验时的粘附量越大[22]。Grasso等[28]发现相对于对数期和衰亡期,处于稳定期的铜绿假单胞菌在白云石上的粘附量最多,这是因为稳定期微生物的γb-最小。

微生物在膜材料以及饮用水输送管道上粘附造成的污染受到研究者的关注。在对其机理探讨方面,Feng等[37]基于藤黄微球菌的表面自由能,采用XDLVO理论分别计算微生物在不同膜材粘附时所需的界面自由能变(ΔGXDLVO),发现其数值越小,对应的试验测试的微生物粘附量越大。Subramani等[3]通过测定恶臭假单胞菌的表面自由能,采用XDLVO理论计算微生物在被不同有机物质污染的聚胺膜上的粘附的ΔGXDLVO,发现其值与单位时间微生物在基质上的粘附量成负相关关系,即ΔGXDLVO越小,单位时间内在基质上的粘附量越多。而Simões等[4]通过微生物表面自由能研究饮用水中细菌在不同材质管道上的粘附时发现只有部分细菌在基质上粘附的理论值与实际粘附量可以相互印证,说明在对微生物粘附机理的研究上,不仅要考虑细胞之间的物化性质,还要考虑微生物的结构,如纤毛、菌毛等对粘附造成的影响[38]

多数研究表明通过对微生物表面自由能的表征,利用粘附理论可以很好地预测微生物在固体基质上的粘附,这为进一步研究微生物粘附的强化和控制生物污染提供指导。

3.2 在油水界面上的粘附

在环境领域中,微生物粘附在液体基质可用于研究微生物在油水界面上粘附强化石油、多环芳烃、有机溶剂等疏水性物质的降解[5];同时,微生物在油水界面粘附可促进生物破乳菌对乳状液的破乳实现资源回收和含油废水处理的双重环境效益。相对于固体基质,研究微生物在油水界面粘附的难度更大,对粘附机理的研究相对较少。

在生物降解烷烃的研究中,Iwabuchi等[31]得出红球菌在不同烷烃与水体系中的粘附行为取决于红球菌的表面自由能成分,且ΔGLW-AB起主导作用。不同碳链长度的烷烃与水体系培养下的红球菌表面自由能发生改变,ΔGLW-AB越低,红球菌越容易粘附在烷烃与水的界面处。Zoueki等[29]分别表征了铜绿假单胞菌和恶臭假单胞菌的表面自由能,采用DLVO理论计算出微生物在碳氢化合物上粘附的ΔGDLVO,其值越低,微生物在碳氢化合物上的粘附越多,与实际的碳氢吸附能力实验相吻合。但是当在碳氢化合物中加入沥青质和树脂时,此时DLVO和XDLVO理论的结果均与实际碳氢吸附能力结果不符,这可能是因为微生物细胞表面的脂多糖、蛋白质以及复杂的脂质等表面分子与沥青质、树脂发生压缩、嵌入、延展等相互作用,引起空间位阻效应,而粘附理论没有将这些协同作用考虑在内。彭开铭等[5]综述细菌的粘附理论后认为应将架桥作用也考虑在内。

在生物破乳的研究中,彭开铭[39]发现不同表面自由能的产碱杆菌在油水界面的粘附不同,产生的破乳效果不同。微生物的γbAB越低,粘附到油相或界面的速率和粘附量越大,有利于微生物在油相中扩散;同时低γbAB容易使微生物聚集沉降,带动模型乳状液滴的聚集、聚并和沉降,促进乳状液破乳[39]。通过LW-AB计算出ΔGLW-AB数值越小,微生物粘附在油相或者油水界面的趋势越明显,理论结果与采用碳氢吸附法表现出的微生物粘附宏观效果是一致的。进一步研究发现产碱杆菌Alcaligenes sp. S-XJ-1的γb-决定微生物在油水两相界面上的行为,其值越低,细胞在油水界面上的粘附越多,越有利于微生物的聚集,从而影响微生物的破乳效能[40]

在实际的工程应用中,碳氢化合物的成分较为复杂,对微生物表面性质的影响也不尽相同,粘附机理较为复杂,因此应该进一步修正和完善粘附理论,以便更好地判断微生物的粘附。

3.3 环境微生物之间的粘附

微生物之间的粘附体现了微生物的聚集能力,它对藻类的收集、颗粒污泥的形成、生物膜的增厚等有很大的影响。藻类的聚集有利于藻类生物量的获取,降低藻类收集的成本。Ozkan和Berberoglu[23]通过表征不同种类藻类的表面自由能后发现藻类的γb-越小,采用LW-AB法计算出的藻类自聚集的ΔGLW-AB越小,藻类越易形成絮凝体,利于藻类的收集。在厌氧发酵产氢时,颗粒污泥的形成可以减少反应器的启动时间。Nomura[35]基于微生物表面自由能采用LW-AB法计算出产甲烷菌和产酸菌自聚过程的ΔGLW-AB,发现ΔGLW-AB是影响微生物细胞行为的一个重要因素,即只有产甲烷菌M. barkeriΔGLW-AB<0,发生细胞聚集,形成颗粒污泥,而其他菌株的ΔGLW-AB>0,不能形成颗粒污泥。废水处理中生物膜的增厚有利于反应器的稳定运行。Das等[30]发现变异链球菌细胞吸附胞外DNA后表面自由能降低,通过XDLVO理论计算出微生物自聚集的ΔGXDLVO降低,理论上形成的聚集体更多,生物膜增厚,与实际微生物的聚集程度变化相一致。

对于环境领域中大多数微生物的粘附,范德华的作用相对较弱,而ΔGABΔG的计算中所占的比重较大,相对而言范德华力的作用较弱,酸碱作用力在该过程中发挥很重要的作用[8]。环境领域中微生物是一个复杂的体系,微生物的表面自由能及其分量在酸碱作用力中起到重要作用。对于大多数微生物表面,γb-是影响环境微生物粘附行为的主要分量。它不仅可以作为表征细胞亲疏水性的半定量指标[9],而且在微生物表面自由能的组成分量中,不同微生物γb-的差异最为显著。

4 展望

通过表面自由能的表征,采用粘附理论对微生物的粘附进行研究,在环境领域中已被广泛应用。微生物的表面自由能是影响该过程的重要因素,其中,γb-的影响较为显著。因此,对环境微生物表面自由能的标准化表征以实现微生物粘附的利用和控制是主要的研究之一,从而更好地服务于微生物的调控以及发挥其环境效益。由于环境体系及微生物表面的差异性和复杂性,粘附理论与实际环境效应还存在一定差距,还需要研究者考虑更多微生物表面物质性质、环境条件等的相互作用,进一步修正粘附理论。

参考文献
[1] Vu K, Yang G, Wang BY, et al. Bacterial interactions and transport in geological formation of alumino-silica clays[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2015, 125: 45-50
[2] Khan MMT, Chapman T, Cochran K, et al. Attachment surface energy effects on nitrification and estrogen removal rates by biofilms for improved wastewater treatment[J]. Water Research, 2013, 47(7): 2190-2198
[3] Subramani A, Huang XF, Hoek EMV. Direct observation of bacterial deposition onto clean and organic-fouled polyamide membranes[J]. Journal of Colloid and Interface Science, 2009, 336(1): 13-20
[4] Simões LC, Simões M, Oliveira R, et al. Potential of the adhesion of bacteria isolated from drinking water to materials[J]. Journal of Basic Microbiology, 2007, 47(2): 174-183
[5] Peng KM, Wang RF, Guo L, et al. Adhesion of bacteria to oil-water interface: mechanism, characteristics and application[J]. Microbiology China, 2014, 41(7), 1410-1416 (in Chinese) 彭开铭, 王若菲, 郭磊, 等. 细菌在油水界面粘附的理论、特性及应用[J]. 微生物学通报, 2014, 41(7): 1410-1416
[6] van Oss CJ, Good RJ, Chaudhury MK. The role of van der Waals forces and hydrogen bonds in “hydrophobic interactions” between biopolymers and low energy surfaces[J]. Journal of Colloid and Interface Science, 1986, 111(2): 378-390lloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects, 1993, 78: 1-49
[7] Hermansson M. The DLVO theory in microbial adhesion[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 1999, 14(1/4): 105-119
[8] van Oss CJ. Acid-base interfacial interactions in aqueous media[J]. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects, 1993, 78: 1-49
[9] Araújo EA, de Andrade NJ, da Silva LHM, et al. Modification of stainless steel surface hydrophobicity by silver nanoparticles: strategies to prevent bacterial adhesion in the food processing[J]. Journal of Adhesion Science and Technology, 2013, 27(24): 2686-2695
[10] Hori K, Matsumoto S. Bacterial adhesion: from mechanism to control[J]. Biochemical Engineering Journal, 2010, 48(3): 424-434
[11] Gerson DF, Scheer D. Cell surface energy, contact angles and phase partition Ⅲ. Adhesion of bacterial cells to hydrophobic surfaces[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes, 1980, 602(3): 506-510
[12] Lee KY, Blaker JJ, Murakami Ⅱ R, et al. Phase behavior of medium and high internal phase water-in-oil emulsions stabilized solely by hydrophobized bacterial cellulose nanofibrils[J]. Langmuir, 2014, 30(2): 452-460
[13] Zhang XR, Jiang ZY, Li MY, et al. Rapid spectrophotometric method for determining surface free energy of microalgal cells[J]. Analytical Chemistry, 2014, 86(17): 8751-8756
[14] Cui ZG. Fundamentals of Surfactants, Colloids, and Interface Chemistry[M]. Beijing: Chemical Industry Press, 2013: 161-163 (in Chinese) 崔正刚. 表面活性剂、胶体与界面化学基础[M]. 北京: 化学工业出版社, 2013: 161-163
[15] Busscher HJ, Weerkamp AH, van der Mei HC, et al. Measurement of the surface free energy of bacterial cell surfaces and its relevance for adhesion[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1984, 48(5): 980-983
[16] Sharma PK, Hanumantha Rao K. Analysis of different approaches for evaluation of surface energy of microbial cells by contact angle goniometry[J]. Advances in Colloid and Interface Science, 2002, 98(3): 341-463
[17] Brown DG, Jaffé PR. Effects of nonionic surfactants on the cell surface hydrophobicity and apparent hamaker constant of a Sphingomonas sp.[J]. Environmental Science & Technology, 2006, 40(1): 195-201
[18] Botton S, Verliefde ARD, Quach NT, et al. Influence of biofouling on pharmaceuticals rejection in NF membrane filtration[J]. Water Research, 2012, 46(18): 5848-5860
[19] Korenevsky A, Beveridge TJ. The surface physicochemistry and adhesiveness of Shewanella are affected by their surface polysaccharides[J]. Microbiology, 2007, 153(6): 1872-1883
[20] Seale RB, Flint SH, McQuillan AJ, et al. Recovery of spores from thermophilic dairy bacilli and effects of their surface characteristics on attachment to different surfaces[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2008, 74(3): 731-737
[21] Khan MMT, Ista LK, Lopez GP, et al. Experimental and theoretical examination of surface energy and adhesion of nitrifying and heterotrophic bacteria using self-assembled monolayers[J]. Environmental Science & Technology, 2011, 45(3): 1055-1060
[22] Chen G, Zhu HL. Bacterial adhesion to silica sand as related to Gibbs energy variations[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2005, 44(1): 41-48
[23] Ozkan A, Berberoglu H. Physico-chemical surface properties of microalgae[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2013, 112: 287-293
[24] Chen G, Driks A, Tawfiq K, et al. Bacillus anthracis and Bacillus subtilis spore surface properties and transport[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2010, 76(2): 512-518
[25] Maataoui H, Barkai H, Sadiki M, et al. Physicochemical characterization of actinomycetes isolated from decayed cedar wood: contact angle measurement[J]. Journal of Adhesion Science and Technology, 2014, 28(20): 2046-2053
[26] Feng WH, Swift S, Singhal N. Effects of surfactants on cell surface tension parameters and hydrophobicity of Pseudomonas putida 852 and Rhodococcus erythropolis 3586[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2013, 105: 43-50
[27] Chen G, Strevett KA. Impact of surface thermodynamics on bacterial transport[J]. Environmental Microbiology, 2001, 3(4): 237-245
[28] Grasso D, Smets BF, Strevett KA, et al. Impact of physiological state on surface thermodynamics and adhesion of Pseudomonas aeruginosa[J]. Environmental Science & Technology, 1996, 30(12): 3604-3608
[29] Zoueki CW, Ghoshal S, Tufenkji N. Bacterial adhesion to hydrocarbons: role of asphaltenes and resins[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2010, 79(1): 219-226
[30] Das T, Krom BP, van der Mei HC, et al. DNA-mediated bacterial aggregation is dictated by acid-base interactions[J]. Soft Matter, 2011, 7(6): 2927-2935
[31] Iwabuchi N, Sharma PK, Sunairi M, et al. Role of interfacial tensions in the translocation of Rhodococcus erythropolis during growth in a two phase culture[J]. Environmental Science & Technology, 2009, 43(21): 8290-8294
[32] Li L, Wang ZM, Rietveld LC, et al. Comparison of the effects of extracellular and intracellular organic matter extracted from Microcystis aeruginosa on ultrafiltration membrane fouling: dynamics and mechanisms[J]. Environmental Science & Technology, 2014, 48(24): 14549-14557
[33] van Oss CJ. Development and applications of the interfacial tension between water and organic or biological surfaces[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2007, 54(1): 2-9
[34] Sheng GP, Yu HQ. Relationship between the extracellular polymeric substances and surface characteristics of Rhodopseudomonas acidophila[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2006, 72(1): 126-131
[35] Nomura T. Control of microbial adhesion using fine particle technology[J]. Advanced Powder Technology, 2012, 23(5): 532-537
[36] Yoshihara A, Narahara H, Kuriyama Y, et al. Measurement of microbial adhesive forces with a parallel plate flow chamber[J]. Journal of Colloid and Interface Science, 2014, 432: 77-85
[37] Feng L, Li XF, Song P, et al. Surface interactions and fouling properties of Micrococcus luteus with microfiltration membranes[J]. Applied Biochemistry and Biotechnology, 2011, 165(5/6): 1235-1244
[38] Perni S, Preedy EC, Prokopovich P. Success and failure of colloidal approaches in adhesion of microorganisms to surfaces[J]. Advances in Colloid and Interface Science, 2014, 206: 265-274
[39] Peng KM. Study of the characteristic of demulsifying Alcaligenes sp. S-XJ-1 cell surface properties and composition, and its action in emulsion[D]. Shanghai: Doctoral Dissertation of Tongji University, 2014 (in Chinese) 彭开铭. 生物破乳菌Alcaligenes sp. S-XJ-1表面物质、性质特征及其对乳状液作用规律的研究[D]. 上海: 同济大学博士学位论文, 2014
[40] Peng KM, Liu J, Lu LJ, et al. Cell surface properties of the demulsifying strain Alcaligenes sp. S-XJ-1 governing its behavior in oil-water biphasic systems[J]. Journal of Adhesion Science and Technology, 2015. DOI: 10.1080/01694243.2015.1095674