砷 (As) 是环境中常见的污染物，能通过多种途径进入人体，对人体的多种组织和器官都能造成明显的损伤^[1]。IARC (国际癌症研究机构) 和WHO将砷列为人类致癌物。砷污染的主要来源是开采、焙烧、冶炼含砷矿石以及生产含砷产品过程中产生的含砷“三废”排放，另外农业上大量使用含砷农药也对环境造成威胁。砷的毒性主要取决于它的化学形态，形态不同毒性差异很大^[2]，所以选择适当、简便和快速的测定方法是现代分析技术取得发展的必要条件。最常用的砷检测分析技术，如原子荧光光谱法、气相色 谱-质谱联用分析法 (GC-MS)^[3]、高效液相相色谱分析-质谱法 (HPLC-MS)^[4-5]和电感耦合等离子体质谱法 (ICP-MS)^[6]等。这些传统的分析方法虽然具备高精确度、低检测限，但是均需要使用昂贵的仪器设备和专业操作人员，因此阻碍了大规模推广应用。

全细胞微生物传感器 (Whole-cell biosensor) 是一种便捷、快速、低成本的环境重金属检测工具，它采用基因工程技术对活体微生物进行改造，使其能够对重金属污染物进行定量分析^[7-8]。但是其特异性欠佳、灵敏度不高一直是限制其广泛应用的瓶颈问题。灵敏度不高是因为细菌体内存在一套对自我耐受保护机制，当重金属进入细菌体内以后，细菌会启动表达“外排泵”基因以泵出重金属，使菌体内重金属浓度维持在较低水平，导致检测灵敏度不高。例如大肠杆菌体内存在一套砷耐受操纵子ars，表达ArsR、ArsB、ArsC三个相关蛋白，ArsR与As (Ⅲ) 结合后，从启动子Pars位置处解离出来，从而启动下游ArsB和ArsC的表达，其中ArsB属于ATPase家族，能够通过消耗 ATP，将胞内 As (Ⅲ) 泵到胞外，ArsC负责将As (Ⅴ) 还原成As (Ⅲ)，并被ArsB泵出胞外^[9-10]。

目前已经报道的砷检测微生物传感器，大都是利用细菌体内本身的砷耐受操纵子，如转录调控因子ArsR来控制报告基因的表达来响应亚砷酸盐^[11-12]。Stocker等构建了带有两个启动子的位点的检测元件，降低了报告基因的本底表达，改善砷反应生物传感器的灵敏度^[12]。

本研究利用基因敲除技术^[13]，获得1株arsB基因敲除菌株，将As³⁺检测元件导入到敲除菌株中，构建出特异性强、敏感性好的As³⁺检测大肠杆菌报告菌株。与利用野生型大肠杆菌作为检测菌株相比，敲除菌株提高了对砷的敏感性，具有更低的检测下限，其在亚砷酸盐检测实验中表现出良好的性能，为目前重金属微生物传感器的优化研究工作提供了有用方案。

1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 菌株

E. coli DH5α [F^-，λ^-，endA1，hsdR17，hsdM⁺，supE44，thi1，recA1，gyrA96，relA1，Δ (argF，lacZYA)，U169，φ80d，Δ (lacZ)，M15]，由本实验室保存；E. coli MC4100 [F^-，araD139，Δ (argF-lac)，U169，rspL150，relA1，flbB5301，fruA25，deoC1，pstF25]，由本实验室保存。

1.1.2 质粒

pKD46[oriR101 repA101ts P_araB-gam-bet-exo Amp^r]为同源重组的协助质粒，阿拉伯糖诱导后表达Bet、Exo和Gam三个λ噬菌体重组酶，完成抗性基因与待敲除基因的替换，高于37 ℃该质粒会丢失。

pKD3 [oriRγ cat bla Cm^r]，线性打靶载体模板，含氯霉素抗性基因 (cat) 和特异性同源重组位点 (FRT)，为重组转化体提供筛选标志，由本实验室保存。

pCP20 [Amp^r，Cm^r] 为Flp重组酶的表达质粒，复制子为温度敏感型，42 ℃诱导Flp重组酶表达消除FRT位点间的氯霉素抗性基因，质粒也逐渐丢失，由本实验室保存。

pET28b [Kana^r]，含有His标签和T7终止子，由本实验室保存。

pEGFP，含有增强型绿色荧光蛋白基因，由本实验室保存。

1.1.3 LB培养基 1.1.4 主要试剂

2×phanta，购于Vazyme公司；DL 5 000 DNA ladder marker，购于宝生物工程 (大连) 有限公司；质粒小量抽提试剂盒、胶回收试剂盒、PCR产物纯化试剂盒，购于宝生物工程 (大连) 有限公司；NaAsO₂、砷标准溶液，购于阿拉丁试剂网-上海阿拉丁生化科技股份有限公司；无缝克隆反应试剂盒购于和元生物技术 (上海) 有限公司；其他所用试剂均为国产分析纯。

1.2 方法 1.2.1 PCR引物设计

用于同源重组的引物，5′端为50 bp的arsB基因两侧的同源臂，3′端为22 bp的用于扩增氯霉素抗性基因 (两侧有FRT位点) 的引物，以pKD3为模板，常规PCR方法扩增氯霉素抗性基因，产物片段长1 149 bp，胶回收后用于电转化上游同源臂引物H₁-P₁。敲除后鉴定上游引物arsB-jianding-F位于arsB基因上游108 bp，下游引物arsB-jianding-R位于arsB基因下游101 bp。

启动子和调节基因arsR序列源于大肠杆菌 E. coli MC4100，基因egfp^[14]来源于Aequoreavictoria的水母gfp的突变体根据文献公布序列合成获得，设计基因融合引物，具体引物信息见表 1。

1.2.2 arsB基因敲除菌株构建

以pKD3质粒为模板，利用P₁和P₂扩增含有arsB基因上下游50 bp同源臂的氯霉素基因片段，PCR反应体系为：2×phanta Taq 50 μL，正反引物各1.0 μL，模板1 μL，用dd H₂O补齐到100 μL。PCR反应条件位：94 ℃ 4 min；94 ℃ 40 s，50 ℃ 40 s，72 ℃ 1.5 min，35个循环；72 ℃ 10 min，4 ℃保存。PCR产物以1.0%的琼脂糖凝胶电泳鉴定并胶回收试剂盒进行胶回收。

细菌培养，电转化方法参见文献^[15]，基因敲除方法参见文献^[13]和^[16]。

1.2.3 砷检测元件及检测菌株的构建

以野生型E. coli MC4100和含egfp质粒为模板，利用P₅和P₆扩增启动子和调节基因Pars-arsR，P₇和P₈扩增增强型绿色荧光蛋白基因egfp，PCR反应体系为：2×phanta Taq 50 μL，正反引物各1.0 μL，模板1 μL，用dd H₂O补齐到100 μL。PCR反应条件位：94 ℃ 4 min；94 ℃ 40 s，52 ℃ 40 s，72 ℃ 1 min，35个循环；72 ℃ 10 min，4 ℃保存。PCR产物以1.0% 的琼脂糖凝胶电泳鉴定并胶回收试剂盒进行胶回收。

Pars-arsR、egfp胶回收片段分别测浓度，按照公式C₁V₁/bp₁=C₂V₂/bp₂，计算Pars-arsR和egfp加入的体积。因为设计引物时，Pars-arsR的反向引物P₆含有egfp的5′端的同源臂单片段的同源臂序列，所以扩增的单片段Pars-arsR下游含有egfp上游同源臂序列，可通过不加引物PCR反应8个循环，将2个基因片段连接起来，交叉PCR反应体系为：2×phanta Taq 15 μL，模板Pars-arsR和egfp分别为1.5 μL和2.4 μL，用dd H₂O补齐到30 μL。反应条件为：94 ℃ 3 min；94 ℃ 40 s，55 ℃ 40 s，72 ℃ 1 min，8个循环；72 ℃、10 min，4 ℃保存。

再以上述30 μL PCR产物为模板，再加入正反引物各0.5 μL和2×phanta Taq 10 μL，用 dd H₂O补齐到总体积为50 μL。PCR反应条件与扩增各元件单片段条件相同。产物以1.0%的琼脂糖凝胶电泳鉴定并胶回收试剂盒进行胶回收。

胶回收的融合基因片段Pars-arsR-egfp与pET28b载体进行无缝克隆连接后，转化到超级感受菌株E. coli DH5α后挑取阳性克隆鉴定并测序 (上海桑尼生物科技有限公司)，测序正确的克隆扩大培养后提质粒，再转化至野生型菌和arsB敲除菌，分别命名为pET28b-Pars-arsR- egfp/arsB^-和pET28b-Pars-arsR-egfp/MC4100。

1.2.4 arsB基因敲除菌株的生长曲线和最低抑菌浓度 (MIC) 的测定

生长曲线的测定：取5-10 μL，-80 ℃保存的转化有pBAD空质粒的arsB基因敲除菌和 MC4100野生菌 (pBAD/arsB^-和pBAD/MC4100) 接种于5 mL新鲜LB液体培养基中，并分别加入终浓度为100 μg/mL的氨苄青霉素，37 ℃、 250 r/min恒温振荡培养过夜。吸取过夜菌液稀释10倍后取500 μL加入比色皿中，用空白LB液体培养基调零，使用Beckman DU 730测定OD₆₀₀值。按照公式V=1/10×OD₆₀₀，吸取适量菌液加入到15 mL LB液体培养基中，并加入氨苄青霉素，使起始菌液OD₆₀₀值约为0.02。每种菌株各做3个平行管，同时分别吸取菌液 400 μL，测定OD₆₀₀值，作为0 h OD₆₀₀值。其余菌液于37 ℃、250 r/min恒温振荡培养。每隔1 h取400 μL菌液测定OD₆₀₀值，监测12 h内浊度变化。对浓度大的菌悬液用LB液体培养基适当稀释后测定，使其OD₆₀₀值在1.0以内，培养液实际的OD₆₀₀值为稀释后测得的OD₆₀₀值乘以相应的稀释倍数。实验结果为3次独立实验的x±s，n=3。

最低抑菌浓度的测定：吸取适量过夜菌液pBAD/MC4100和pBAD/arsB^- 加入到50 mL 新鲜LB液体培养基中，使起始菌液OD₆₀₀值为0.02，并分别加入氨苄青霉素，分装 (5 mL/管)，加入As³⁺溶液，使其终浓度分别为0.5、2、8、32、128、512、1 024、2 048、4 096、5 000 (×10^-6 mol/L)，另加等体积无菌MilliQ H₂O作为阴性对照，37 ℃、250 r/min振荡培养，监测其 9 h内浊度改变，测量各管菌液OD₆₀₀值。重复试验3次，每个浓度各做3个平行管。数据处理：汇总至少3次细菌对As³⁺的敏感性结果，得出2种细菌各自的最小抑菌浓度 (MIC)。10 h后由于培养基营养成分耗尽，部分细菌吸光度有所下降，故以0-9 h作为细菌生长情况的监测时段。并且规定：9 h后，使试验管OD₆₀₀值与对照管OD₆₀₀值之比不大于10%的最低As³⁺浓度为细菌的最低抑菌浓度 (MIC)。实验结果为3次独立实验的x±s，n=3。

1.2.5 传感器对As³⁺的孵育时间实验

取pET28b-Pars-arsR-egfp/MC4100和pET28b- Pars-arsR-egfp/arsB^- 过夜菌加入到50 mL新鲜LB液体培养基中，使起始菌液OD₆₀₀值为0.02，并分别加入终浓度为50 μg/mL的卡那霉素，扩大培养至OD₆₀₀值为0.5左右 (OD₆₀₀值为0.5左右大肠杆菌处于对数生长期)，加入As³⁺溶液使终浓度为0.1、1.0、5.0、10 (×10^-6 mol/L)，每个浓度各做3个平行管，另加等体积无菌MilliQ H₂O作为阴性对照。将以上菌液于37 ℃、 250 r/min振荡培养，分别在0、1、2、3、4、5、6、7 h时间点收集菌液1 mL，8 000 r/min离心2 min，弃上清。收获的菌体用蛋白纯化脱盐缓冲液 (Desalting buffer，DB) 重悬，然后取重悬菌液稀释20倍后 (根据菌液浓度稀释不同倍数，使得OD₆₀₀值相差不大)，分别测量其稀释液荧光值与OD₆₀₀值。激发光波长为481 nm，发射光波长为511 nm。重复试验3次，每个浓度各做3个平行管。

1.2.6 传感器检测As³⁺的线性范围确定

分别取pET28b-Pars-arsR-egfp/arsB^-和pET28b-Pars-arsR-egfp/MC4100过夜菌以1∶50接到新鲜LB培养基中，37 ℃、250 r/min扩大培养至OD₆₀₀值为0.5左右，分装至试管 0.99 mL/管，加入10 μL不同浓度的As³⁺ 溶液至各管菌液终浓度分别为0、0.013×10^-6、0.13×10^-6、0.27×10^-6、0.53×10^-6、0.67×10^-6、1.07×10^-6、2.14×10^-6、2.67×10^-6、4.27×10^-6、8.54×10^-6、10.68×10^-6、17.09×10^-6、34.18×10^-6、42.71×10^-6 mol/L，各做3个平行管。将以上菌液于37 ℃、250 r/min振荡培养4 h后，进行样品处理，处理步骤同上，完成传感器对As³⁺的检测线性范围的确定。

1.2.7 传感器对As³⁺的最低检测限 (The limit of detection,LOD) 的确定

将pET28b-Pars-arsR-egfp/MC4100和pET28b-Pars-arsR-egfp/arsB^- 过夜菌种子液加入到20 mL新鲜LB液体培养基中，使起始菌液OD₆₀₀值为0.02，37 ℃、250 r/min扩大培养至OD₆₀₀为0.5左右，分装 (0.99 mL/管)，每管加入10 μL无菌MilliQ H₂O，做10个平行管，37 ℃、250 r/min振荡培养3 h后，4 000 r/min水平离心10 min，弃上清，收获的菌体重悬于 1 mL DB中，然后取50 μL重悬菌液20倍稀释于0.95 mL DB中，混匀，分别测量其稀释液荧光值与OD₆₀₀值。实验数据处理^[17]：

$\text{LO}{{\text{D}}_{\text{AFU}}}=2\frac{{{{\text{\bar{X}}}}_{\text{W}}}\text{+3SD}}{{{{\text{\bar{X}}}}_{\text{W}}}}$

X_W为报告菌株背景荧光值的平均值 (10个平行管)，SD值为报告菌株背景荧光值的标准差。由LOD_AFU代入As³⁺标准曲线计算出的LOD值的单位为mol/L As³⁺。

1.2.8 传感器对As³⁺的特异性实验

吸取pET28b-Pars-arsR-egfp/arsB^- 过夜菌加入到50 mL新鲜LB液体培养基中，使起始菌液OD₆₀₀值为0.02，37 ℃、250 r/min扩大培养至OD₆₀₀值为0.5左右，分装至试管0.99 mL/管，分别加入10 μL不同种类的金属离子 (As³⁺、Pb²⁺、Cd²⁺、Cu²⁺、Mn²⁺、Fe²⁺、Hg²⁺、Ni²⁺、Co²⁺) 使其终浓度分别为0.5、5、10 μmol/L，另加等体积无菌MilliQ H₂O作为阴性对照，各做3个平行管。将以上菌液于37 ℃、250 r/min振荡培养4 h后 (Pb²⁺离子为避光孵育)，处理步骤同上。

1.2.9 传感器对检测样品中As³⁺的回收实验

从实验室附近采集河水样品，经孔径为 0.22 μm的过滤器对杂质和细菌进行过滤。用移液枪吸取计算好的pET28b-Pars-arsR-egfp/arsB^-过夜菌种子液加入到上述90 mL新鲜LB液体培养基中，使起始菌液OD₆₀₀值约为0.5，分装 (0.9 mL/管)，加入等体积不同浓度的砷单元素标准溶液至各管菌液，使其终浓度分别为0、0.13、1.07、4.27、10.68、17.09 μmol/L，然后再分别加入100 μL过滤后的湖水至每管菌液，每种浓度各做3个平行管。将以上菌液于37 ℃、 250 r/min振荡培养4 h后，8 000 r/min水平离心2 min，弃上清，收获的菌体重悬于1 mL DB中，然后取50 μL重悬菌液20倍稀释于0.95 mL DB中，混匀，分别测量其稀释液荧光值与OD₆₀₀值。然后根据上述标准曲线的回归方程计算样品中As³⁺ 的浓度，并利用电感耦合等离子体质谱仪 (ICP-MS) 对待测样品溶液的As³⁺进行验证，最后计算加标回收率。实验结果为3次独立实验的x±s，n=3。

2 结果与分析 2.1 arsB基因敲除菌株的构建

以E. coli MC4100基因组DNA为模板，用引物P₃和P₄扩增出arsB基因，以arsB::cat/MC4100基因组DNA为模板，用引物P₃和P₄扩增出arsB::cat基因和用引物P₁和P₂扩增出arsB::cat基因；以及以arsB^-基因组DNA为模板，用引物P₃和P₄进行扩增，PCR产物经1.0%的琼脂糖凝胶电泳鉴定，如图 1所示，说明成功制备arsB基因敲除菌株arsB^-。

2.2 砷检测元件及检测菌株的构建

根据测序结果显示，砷检测元件已经成功构建，融合基因片段Pars-arsR-egfp 大小为 1 298 bp，碱基序列与理论完全匹配。挑取测序鉴定正确的质粒pET28b-Pars-arsR-egfp，转化至E. coli MC4100和arsB^-感受态细胞中，从而成功构建As³⁺检测菌株。

2.3 arsB基因敲除菌株的生长曲线和最低抑菌浓度 (MIC) 的测定

由于将砷外泵基因arsB敲除，为了验证对其生长是否产生影响，我们首先进行了生长曲线测定。生长曲线结果如图 2A所示，在LB培养基中，arsB基因敲除菌与野生型生长速率一致，说明对大肠杆菌的arsB基因进行敲除不会影响其生长状态和稳定性。

为验证arsB缺失以后，大肠杆菌对As³⁺的敏感性是否增强。我们对敲除菌进行了最低抑菌浓度的测定。如图 2B所示，我们发现arsB敲除菌株在培养基As³⁺浓度为125 μmol/L时，其生长已基本被抑制。而野生型菌株需要达到4 mmol/L时才受到抑制。这表明arsB基因敲除后，大肠杆菌对培养基中As³⁺的敏感性显著增强。

2.4 检测菌株对As³⁺的孵育时间实验

蛋白表达和成熟需要经过一系列的转录、翻译以及翻译后修饰过程，而且荧光蛋白发出荧光信号需要经过荧光信号的成熟过程，所以有必要对传感器的最佳孵育时间进行摸索。用不同终浓度的As³⁺溶液诱导此传感器，在不同时间点测定EGFP荧光信号。图 3结果表明，在0-6 h内，随着诱导时间的延长，无论是低浓度还是高浓度的As³⁺，其诱导的EGFP荧光信号都逐渐增强，在6 h时基本达到最高点后，荧光强度逐渐减弱。由于传感器在实际应用中检测时间的长短是一个重要考虑因素，本研究采用4 h作为诱导时间，因为诱导4 h的荧光信号强度也已达到最强荧光信号的70%-80%以上，基本满足检测需求。

2.5 检测菌株检测As³⁺的线性范围确定

arsB砷外排泵基因敲除之后，能够减少细菌内砷离子的主动胞外转运，可以增加对砷的敏感性 (图 2B)。因此，我们进行检测菌株检测As³⁺的线性范围的摸索和确定。如图 4所示，以As³⁺浓度为横坐标，AFU值为纵坐标作图，并进行曲线拟合。结果显示，经过4 h诱导后，野生型砷检测菌株的线性回归方程为y=664.66 + 619.43 log(x)，R² = 0.993 5，此时检测线性范围为0.13×10^-6-42.71×10^-6mol/L。相比之下，arsB基因敲除型检测菌株的线性回归方程为y=1 002.8 + 824.79 log(x)，R² = 0.994 6，对应的线性检测范围为0.013×10^-6-42.71×10^-6mol/L。这表明在保证良好的线性拟合条件下，arsB基因敲除型检测菌株具有更低的检测下限。图中也可以看出arsB基因敲除型检测菌株对As³⁺ 具有更高的荧光信号响应度。

2.6 检测菌株对As³⁺的最低检测限 (LOD) 的确定

为进一步验证arsB基因敲除的检测菌株是否对As³⁺具有更低的检测极限 (LOD)，我们检测了两种菌株的最低检测限。根据实验结果计算得出，pET28b-Pars-arsR-egfp/arsB^- 菌株对As³⁺的LOD值为5.13×10^-9 mol/L或3.843×10^-4 mg/L，pET28b-Pars-arsR-egfp/MC4100 菌株对As³⁺ 的LOD值为126.1×10^-9 mol/L或94.47×10^-4 mg/L。如图 5所示，arsB基因敲除型检测菌株对As³⁺具有更低的检测下限，其最低检测限大约只有野生型检测菌株的4%，证明arsB基因敲除型检测菌株在实际应用中能够检测到更低的As³⁺ 浓度。

2.7 检测菌株对As³⁺的特异性实验

从以上结果得知，arsB基因敲除型检测菌株对As³⁺的检测具有更低的检测下限和响应度，具有更好的实际应用前景。考虑到传感器对待测物质的特异性检测是其实际应用的前提，为验证我们构建的arsB基因敲除型检测菌株是否具有较高的特异性，我们加入等体积 (10 μL) 不同种类的金属离子 (As³⁺、Pb²⁺、Cd^{2 +}、Cu²⁺、Mn²⁺、Fe²⁺、Hg²⁺、Ni²⁺、Co²⁺)，终浓度分别为0.5、5、10 μmol/L，对构建成功的检测As³⁺微生物传感器进行诱导，并用等体积无菌MilliQ H₂O作为阴性对照，检测其特异性。将As³⁺的AFU值定义为100%，并以其他各金属离子的AFU值与As³⁺ AFU值的百分比表示对各金属离子选择的特异性。结果表明 (图 6)，无论是高浓度还是低浓度的金属离子，只有As³⁺能诱导此传感器产生荧光，其他金属对其荧光表达的干扰性非常弱 (均低于10%)，证明此传感器特异性良好。

2.8 传感器对检测样品中As³⁺的回收实验

微生物传感器的构建和优化的最终目的是将其运用到实际应用中，所以我们将构建的As³⁺检测菌株进行了河水样品的加标回收率评估实验。表 2可以看出，以电感耦合等离子体质谱仪 (ICP-MS) 检测的结果作为金标准，构建的As³⁺检测菌株对河水样品中的As³⁺检测回收率基本在80%以上，表明此传感器具有较为良好的检测水体中砷离子的应用前景。

3 讨论

随着工农业的快速发展，水体中砷污染问题日趋严重，因此砷离子的检测尤为重要。传统的重金属检测方法如ICP-MS、冷原子吸收法等，需要专业设备，成本高，且操作比较繁琐，由于微生物传感器因其简便、快速、低廉、易推广等优点，近年来得到快速发展，例如检测铅^[18]、砷^[19]。本研究构建的生物传感器可通过荧光信号强度直观、特异地反映水体中的As³⁺浓度，操作简便，是传统检测方法的一个有力补充。

近年来，研发理想的砷离子检测微生物传感器一直处于探索之中^[19-20]，然而均存在敏感性差、检测限高的瓶颈问题。Li等^[20]通过将arsR操纵子突变和高通量筛选提高其活性，但其检测下限较高。胡春霞等^[20]以绿色荧光蛋白为报告基因构建的环境砷离子生物检测体系的检测范围为0.2-1.0 μmol/L，还有Huang等构建的传感器^[21]，检测范围为10-500 μg/L。Francisco等构建了带有两个启动子的位点的检测元件，降低了报告基因的背景值，改善了砷反应生物 传感器的灵敏度^[12]。

很多微生物具有一套消除重金属毒害的抗性机制，如通过酶参与的氧化还原反应将重金属转化为毒性较弱的形态 (如借助细胞质汞还原酶的催化将汞离子还原成毒性较弱的金属汞)^[22]。但是微生物对砷的利用是通过氧化还原反应将其从砷酸盐转化为毒性更强的亚砷酸盐，然后借助特殊的砷转运蛋白将其从细胞中转运出去，导致野生型大肠杆菌对砷离子检测的敏感度不高^[10]。本研究通过基因敲除技术将大肠杆菌基因组上合成砷外排泵的基因arsB敲除，从而使进入菌体内的砷离子不能有效排出，其敏感性提高了30多倍 (图 2B)。而且 ，利用arsB敲除菌株作为砷检测元件的宿主菌体，其对As³⁺的最低检出下限是野生型菌株最低检出限的1/25，可低至5.13×10^-9 mol/L (3.843×10^-4 mg/L)。

自然界水体环境中，砷离子主要以三价砷 (As³⁺) 和五价砷 (As⁵⁺) 的形式存在，其中三价砷的毒性更大^[23]，故本文主要采用As³⁺为检测对象，对构建的砷离子传感器进行优化和评估。事实上，本文构建的砷离子传感器同样能够对As⁵⁺进行有效检测 (数据未呈现)，只是达到最高荧光信号强度的孵育时间比As³⁺略久。这主要是因为进入菌体中的As⁵⁺需要先通过ArsC还原成As³⁺才能被砷离子检测元件检测到。我们将进一步对其检测As⁵⁺或总砷的条件和参数进行优化和确定，使其能得到更广泛的应用。

本研究构建的As³⁺检测传感器的线性检测范围为0.013-42.71 μmol/L。相比以往的砷检测微生物传感器，此传感器检测限更低，检测范围更宽，准确性良好，在检测重度砷污染环境具有较大优势，呈现出较好的应用前景。后续还需不断的深入探索，对该传感器进行进一步优化，比如在已经构建好的质粒上，进行多个完整检测元件的串联，以极大提高传感器检测灵敏度，从而进一步缩短相应的检测时间，以推进微生物传感器在环境监测领域的应用。