服务
文章信息
- 梁航华, 高洪燕, 徐曼, 谭鹏, 崔红娟
- Hanghua Liang, Hongyan Gao, Man Xu, Peng Tan, and Hongjuan Cui
- 家蚕BmBrat 基因的克隆与鉴定
- Cloning and characterization of BmBrat in silkworm, Bombyx mori
- 生物工程学报, 2016, 32(3): 375-384
- Chin J Biotech, 2016, 32(3): 375-384
- 10.13345/j.cjb.150330
-
文章历史
- Received: July 17, 2015
- Accepted: November 14, 2015
NHL家族的名字源于发现的3个成员:NCL-1、HT2A和LIN-41,这3个因子与RNA代谢有关系,可能参与转录后基因的表达调控[1]。研究表明,NHL家族的成员均含有3个保守的基序:1个RING、1个或是2个B-box和1个coiled-coil [2]。在调节Brat (Brain tumor) 蛋白的活性中NHL结构起了至关重要的作用[3]。Brat本身是一类肿瘤抑制基因,但同时也是一个控制细胞增殖的候选基因,属于NHL蛋白家族的成员[4]。在果蝇神经系统中,Brat的表达在很大程度上限制了胚胎时期周围神经系统、腹神经索和脑的发育[5]。在干细胞发生系统中,Brat与Prospero、Numb等作为细胞命运决定因子,促进细胞命运的变化[6]。Numb是一种膜结合蛋白,参与Notch 信号通路的调控[7]。在神经前体细胞分裂期间,Numb聚集到细胞的一端,与细胞膜结合形成新月板,细胞分裂期间通过不对称分裂进入神经节母细胞中,Numb蛋白结合α-泛素介导蛋白质活性调节因子Sanpodo抑制Notch蛋白[8-9]。Notch 信号通路在神经母细胞的增殖分化过程中起着至关重要的作用。Notch信号通路受到抑制可以使细胞从自我更新逐渐开始分化分裂[10]。而Prospero是转录调节蛋白,在胚胎和幼虫的神经母细胞中均存在,最终在分化的胶质细胞中持续表达[11],在决定细胞命运和细胞增殖调控中Prospero作为Brat下游的一个调控因子起着关键的作用。研究Brat在细胞分化和增殖中的作用,能为干细胞的分化提供理论依据。在人与哺乳动物中brat的同源蛋白是TRIM蛋白家族,它们在发育、分化和宿主细胞的抗病毒防御以及癌症中都起到作用。TRIM家族是NHL结构域的一个亚群,该亚群包含哺乳动物的TRIM2、TRIM3、TRIM32和TRIM71等,包括果蝇中的Brat、Mei-p26、Abba和Wech,以及秀丽隐杆线虫中的Ncl-1、Nhl-1、Nhl-1、Nhl-3和Lin41[12],其中TRIM3是一个肿瘤抑制因子,能结合到cdk抑制因子p21WAF1/CIP1,通过隔绝p21并阻止它积累Cyclin D1-CDK4抑制癌症的发生[13-14]。在小鼠中降低TRIM3的表达将增加并加速血小板生长因子 (PDGF,platelet-derived growth factor) 引起的神经胶质瘤发生率[15]。
家蚕是我国重要的经济昆虫,同时也越来越多地作为无脊椎模式动物进行研究。目前家蚕BmBrat基因未见报道,本研究利用RACE技术获得BmBrat基因全长,通过诱导大肠杆菌原核表达获得重组蛋白进而制备抗体,为更深入研究Brat基因在细胞增殖分化与个体发育中的作用奠定了基础。
1 材料与方法 1.1 材料实验所用家蚕品种为大造,由西南大学家蚕基因库提供。蚕卵在25 ℃相对湿度60%-80%下催青,孵化后幼虫在25 ℃下桑叶饲育。感受态细胞购自全式金公司。质粒提取试剂盒购自Omega公司。胶回收试剂盒购自Axygen公司。Trizol试剂和RACE试剂盒购自Invitrogen公司。PMD19-T simple载体、限制性内切酶、Taq酶和T4 DNA连接酶均购自TaKaRa公司。反转录试剂购自Promega公司。引物由北京六合华大基因科技股份有限公司合成。多聚甲醛为上海生工生物工程公司产品。DAPI和抗荧光猝灭剂为碧云天生物技术公司产品。
1.2 方法 1.2.1 总RNA的提取和cDNA的合成取各发育时期的蚕卵和5龄3 d幼虫的头、体壁、血液、中肠、精巢、卵巢、马氏管、脂肪体等组织器官,除血液直接加入Trizol外,其他组织经液氮研磨后加入Trizol,按照Invitrogen公司Total RNA操作指南提取总RNA。利用琼脂糖电泳和紫外分光光度计分别检测RNA产物的完整性、纯度和浓度。使用DNA酶在37 ℃消化30 min后,依照反转录试剂盒说明书反转录获得cDNA。
1.2.2 RACE法扩增全长序列设计基因特异RACE引物GSP1、NGSP1、GSP2、NGSP2,引物序列见表 1。随后按照 RACE试剂盒进行5′RACE和3′RACE扩增。扩增产物经1%琼脂糖电泳后,回收目的条带,连接到PMD19-T simple载体上,转化后提取阳性克隆,测序后进行拼接,获得BmBrat基因全长cDNA序列。
Primer names | Primer sequences (5´-3´) |
GSP1 | GTGTCTTGGGCAGAATGCGGTTTT |
NGSP1 | GCCGGTGCAACGAGCCAAGGGAGA |
GSP2 | TCCCTTGGCTCGTTGCACCGGCTG |
NGSP2 | GCCCTGACAGTGGTTGGACAAAAG |
BmBrat -F BmBrat -R | GGTGCCAACTCAATAGGT AATGGCGAAGTAGACTGG |
Bmbrat-P2-EcoR1-F | CCGGAATTCCAAGTTCAGTATCACAAGGCA |
Bmbrat-P2-Xho1-R | CCGCTCGAGAAGCAGTCAGTGAGTATGGG |
拼接得到的序列在ORF Finder (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html)网站进行ORF预测以及氨基酸序列翻译。使用Swiss-model (http://swissmodel.expasy.org),SMART (http://smart.embl-heidelberg.de/),SignalP 4.1 Serve (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/),TMHMM Server v. 2.0 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/),ExPasy (http://www.expasy.org/tools/)等在线软件预测蛋白结构域、分子量和等电点等信息。
1.2.4 表达谱分析分别以家蚕5龄3 d各组织及胚胎各发育时期cDNA为模板对BmBrat进行半定量PCR 检测,检测引物为BmBrat (引物序列见表 1),以肌动蛋白3 (BmActin3) 为内参[16]。PCR总反应体系为25 µL:10×PCR缓冲液2.5 µL,2.5 mmol/L dNTPs 2 μL,10 µmol/L上、下游引物各0.5 µL,HiFi-Taq酶0.2 µL,模板1 µL,加灭菌的双蒸水至总体积为25 µL。反应条件为:94 ℃预变性4 min;94 ℃变性30 s、55 ℃退火30 s、72 ℃延伸90 s,共28个循环;72 ℃延伸10 min;4 ℃保存。扩增产物经1%琼脂糖电泳,EB 染色,Bio-Rad凝胶成像系统成像进行分析。
1.2.5 原核表达、蛋白纯化及抗体制备用软件预测BmBrat的抗原特异性,截取部分片段设计引物Bmbrat-P2 (引物序列见表 1),将扩增产物连接到pET-32a载体上,获得pET32a-BmBrat重组质粒。将重组质粒pET32a- BmBrat转化到Rosetta感受态细胞,获得单菌落并扩大培养,分别用0.6 mmol/L IPTG在15 ℃诱导12 h及37 ℃ 6 h后,收集菌液,超声裂解离心分离上清和沉淀,然后进行SDS-PAGE检测目的蛋白。考马斯亮蓝染色分析蛋白在上清和沉淀中的表达情况,最终选择37 ℃大规模诱导。振荡培养至OD600=0.6,用0.6 mmol/L IPTG 37 ℃诱导表达6 h后,收集菌体,用PBS重悬,裂解后超声破碎收集沉淀,尿素溶解后用0.45 µm滤膜抽滤进行Ni离子亲和柱纯化,使用不同咪唑浓度的洗脱液进行梯度洗脱,收集洗脱液后用SDS-PAGE分析蛋白纯化情况。注射重组蛋白前利用谷胱甘肽稀释还原法对其进行复性,加PBS将蛋白浓度稀释至0.5 mg/mL,加入氧化型谷胱甘肽 (GSH) 至终浓度为2 mmol/L,同时加入还原性谷胱甘肽 (GSSG) 至终浓度为10 mmol/L,4 ℃复性过夜,PBS透析,PEG2000浓缩[17]。使用纯化复性好的重组蛋白注射健康的成年雄性昆明小鼠3只,每只小鼠注射前剪尾尖取血,收集约50 µL正常血清,作为阴性对照,室温静置后离心收集上清,上清与甘油以1∶1的比例混合后于-80 ℃保存。小鼠进行免疫时每只腹腔注射5次蛋白,第一次与弗式完全佐剂等体积混合,后4次均与弗式不完全佐剂等体积混合,所用蛋白量依次为50、70、90、110和120 µg,前3次间隔10 d进行免疫,后2次间隔14 d免疫,最后1次免疫1周后,摘眼球取血,室温静置2 h,3 000 r/min离心10 min将血清取出,加入0.02%的NaN3后,-80 ℃中保存。
1.2.6 BmBrat抗体特异性检测将原核表达并纯化得到的重组蛋白作为样品,进行Western blotting检测免疫血清的特异性。蛋白经SDS-PAGE电泳及转膜后,于5%的牛奶封闭液中,室温缓慢摇荡封闭2 h。分别将免疫血清和免疫前血清以1∶1 000稀释后于4 ℃孵育过夜。之后将膜用TBST洗3次,每次15 min,用1×TBST 稀释二抗 (1∶5 000),将PVDF膜浸没于二抗液中,室温缓慢摇荡2 h。再次用TBST洗3次,每次10 min,用ECL显色液进行显色及用成像仪进行曝光。家蚕胚胎细胞系BME-SWU3铺到有爬片的24孔板中,爬片过夜。使用4%多聚甲醛固定15 min,0.5% Triton-100打孔15 min。室温条件下用10%山羊血清封闭2 h后分别用免疫前血清和抗BmBrat的免疫血清,4 ℃孵育过夜。孵育完二抗漂洗后DAPI染色,使用抗荧光猝灭剂封片,在荧光显微镜下观察检测。
1.2.7 血细胞定位BmBrat将家蚕血细胞用4%多聚甲醛固定30 min,加入1% Triton-100静置10 min后PBS漂洗。用10%山羊血清封闭液室温封闭2 h,之后分别用免疫前血清和抗BmBrat的免疫血清4 ℃孵育过夜。孵育完二抗漂洗后DAPI染色,使用抗荧光猝灭剂封片,在荧光显微镜下观察检测。
2 结果 2.1 家蚕BmBrat基因全长克隆与分析从NCBI下载不同物种的Brat基因序列,并在家蚕基因组数据库进行Blast分析以确定家蚕同源基因。以家蚕5龄3 d的头部cDNA为模板进行PCR扩增。通过RACE技术,得到了3′端的序列和5′端的序列,连接到pMD19T- simple载体测序,拼接后获得了3 614 bp全长序列,包括239 bp的5′UTR和795 bp的3′UTR,预测得到其ORF为2 580 bp,编码859个氨基酸残基,蛋白分子量为94.3 kDa,等电点为6.65 (图 1A-1C)。通过在线预测软件进行结构域分析,家蚕的Brat蛋白质序列中存在1个保守的RING结构域,2个B-BOX结构域、1个保守的BBC结构域和3个连续的NHL结构域 (图 1C)。利用SignalP 4.1 Server预测,发现在N端区域没有信号肽 (图 1D)。
2.2 BmBrat基因在家蚕胚胎及幼虫各组织表达谱分别以等量的家蚕胚胎期1-9 d和幼虫5龄3 d (L5D3) 各组织的cDNA为模板,以肌动蛋白3 (Actin3) 为内参进行半定量PCR检测该BmBrat基因的表达情况。结果显示BmBrat在胚胎4 d、5 d的时候高量表达,之后其表达量开始逐步下降 (图 2B);而在L5D3幼虫各组织中均有表达,其中卵巢和头表达量最高,其次是丝腺、中肠、精巢和脂肪体,马氏管和表皮中BmBrat表达量相对较低 (图 2A)。
2.3 BmBrat的原核诱导表达PCR扩增得到777 bp的片段用于构建原核表达载体 (图 3A-a),结构如图 3B所示。将载体经EcoRⅠ和XhoⅠ双酶切验证,有777 bp的片段出现 (图 3A-b),与预期结果相符,表明已成功构建重组表达质粒pET32a-BmBrat。在37 ℃和15 ℃温度下诱导表达重组蛋白,SDS-PAGE电泳检测发现BmBrat重组蛋白都属于包涵体,且在37 ℃诱导条件下,重组蛋白的表达量要比15 ℃条件下产生的多 (图 3C),于是后续采用37 ℃的条件下进行BmBrat重组蛋白大量诱导。根据重组蛋白上的6×His标签进行Western blotting检测,证明其确实为目的蛋白 (图 3D-a)。经不同浓度的咪唑洗脱液进行梯度洗脱后,对流出液进行SDS-PAGE分析 (图 3D-b),结果表明200 mmol/L与500 mmol/L咪唑洗脱液中只有目的蛋白大小的单一条带,而没有其他杂带,满足后续实验要求。
2.4 抗BmBrat血清检测在完成5次免疫后,通过摘除小鼠眼球的方法,获取免疫血清。使用重组蛋白通过Western blotting分析免疫血清的特异性。结果显示,BmBrat免疫血清能特异性地识别大肠杆菌诱导产生的重组BmBrat蛋白 (图 4B)。随后又以小鼠免疫前的正常血清作为对照,利用免疫血清对家蚕细胞系BME-SWU3进行免疫荧光检测。对照组中无荧光信号,但是实验组细胞中可以检测到BmBrat蛋白的表达 (图 4A)。以上结果说明我们所制备的BmBrat抗体可以特异性识别BmBrat蛋白,可为后续研究BmBrat基因的功能提供抗体支持。
2.5 Bmbrat蛋白在家蚕血细胞定位前面的实验结果显示BmBrat在家蚕细胞系中有表达,为了进一步了解BmBrat的表达情况及其可能发挥的作用,我们对其在家蚕血细胞中的定位进行了分析。免疫荧光结果显示,与使用阴性血清的对照组相比,实验组中可以明显检测到荧光信号,即家蚕血细胞中有BmBrat蛋白的表达,并且该蛋白只表达于部分血细胞的细胞质中 (图 5)。
3 讨论本实验首先通过在NCBI和家蚕数据库中检索,获得家蚕中Brat同源基因BmBrat。利用RACE技术得到该基因的全长。通过信息学分析,发现该基因编码的蛋白有4个相对保守的结构域,从N端到C端分别是1个RING、2个B-Box和1个BBC结构域,具有典型的NHL结构域,暗示其可能在细胞的增殖分化中发挥功能[2]。对BmBrat在家蚕胚胎时期的表达谱分析中发现,该基因表达量在第4、5天达到高峰,之后逐天下降。蚕卵的催青期约需10 d,其间胚胎发育时期依次分为最长期、肥厚期、突起发生期、突起发达前期、突起发达后期、缩短期、反转期、反转终了期、气管显现期、点青期、转青期,之后便孵化收蚁[18]。其中前6天即到反转期属于胚胎的器官形成时期,而4、5 d时处于突起发达期和缩短期,是器官形成的高峰,这一时期该基因高表达,到了第6天后器官发育基本完成,这时该基因的表达也出现了显著下降。这表明BmBrat与家蚕胚胎发育过程中器官形成有关。而5龄3 d幼虫各组织表达谱分析发现,该基因在各组织中均有明显表达,且在生殖腺和头部表达量最高,这表示BmBrat在家蚕各组织的发育与生长中具有一定的功能。研究表明,在果蝇中Brat在正在分化的生殖细胞中有多种功能。已知生殖干细胞的维持是受Dpp信号途径[19]和翻译抑制因子Nanos (Nos)/Pumilio (Pum) 所调控的[20]。在卵巢中,Pum-Nos调节Brat的mRNA水平,限制其在包囊干细胞中的表达[21]。增大Dpp信号,能够促进Pum-Nos对Brat mRNA生成的抑制作用[22]。在分裂过程中,Dpp信号途径沉默,Dpp信号的减少使Nos下调,从而促进Brat的表达,与Pum形成新的复合物抑制了Dpp信号途径中的Mad和dMyc mRNAs,降低了包囊干细胞对Dpp信号的反应能力,促进细胞分化[23],使这个子细胞变成分化的包囊干细胞,另一个子细胞继续接受Dpp自我更新的信号[24]。家蚕BmBrat是否具有类似功能还有待进一步研究。另外,利用我们自制的BmBrat抗体在家蚕血细胞中对BmBrat蛋白进行亚细胞定位,发现该蛋白只存在于部分血细胞中,且只在细胞质中表达。家蚕血细胞有原血球细胞 (Prohemocyte)、小球细胞 (Spherule cell)、拟绛色细胞 (Oenocytoid)、颗粒细胞 (Granular cell) 和浆细胞 (Plasmatocyte) 5类[25],BmBrat只在部分细胞中表达,其是否与血细胞的分化有关也值得进一步研究。后续我们将利用不同种类血细胞的特异性分子标记,探索该蛋白具体存在于哪一类或几类血细胞中,有助于更好地揭示其功能。综上所述,BmBrat作为一个新基因至今鲜有报道,功能尚不清楚,猜测其与细胞增殖分化相关。本研究成功制备了BmBrat多克隆抗体,为后续实验提供了抗体工具。
[1] | Loedige I, Filipowicz W. TRIM-NHL proteins take on miRNA regulation. Cell, 2009, 136 (5) : 818–820 (in Chinese). |
[2] | Petrera F, Meroni G. TRIM proteins in development. Adv Exp Med Biol, 2012 : 131–141 (in Chinese). |
[3] | Marchetti G, Reichardt I, Knoblich JA, et al. The TRIM-NHL protein Brat promotes axon maintenance by repressing src64B expression. J Neurosci, 2014, 34 (41) : 13855–13864 (in Chinese). |
[4] | Loedige I, Stotz M, Qamar S, et al. The NHL domain of BRAT is an RNA-binding domain that directly contacts the hunchback mRNA for regulation. Genes Dev, 2014, 28 (7) : 749–764 (in Chinese). |
[5] | Sonoda J, Wharton RP. Drosophila Brain Tumor is a translational repressor. Genes Dev, 2001, 15 (6) : 762–773 (in Chinese). |
[6] | Lee CY, Wilkinson BD, Siegrist SE, et al. Brat is a Miranda cargo protein that promotes neuronal differentiation and inhibits neuroblast self-renewal. Dev Cell, 2006, 10 (4) : 441–449 (in Chinese). |
[7] | Cotton M, Benhra N, Le Borgne R. Numb inhibits the recycling of Sanpodo in Drosophila sensory organ precursor. Curr Biol, 2013, 23 (7) : 581–587 (in Chinese). |
[8] | Hutterer A, Knoblich JA. Numb and α-Adaptin regulate Sanpodo endocytosis to specify cell fate in Drosophila external sensory organs. EMBO Rep, 2005, 6 (9) : 836–842 (in Chinese). |
[9] | Berdnik D, Török T, González-Gaitán M, et al. The endocytic protein α-Adaptin is required for numb-mediated asymmetric cell division in Drosophila. Dev Cell, 2002, 3 (2) : 221–231 (in Chinese). |
[10] | Wang W, Liu WK, Wang Y, et al. Notch signaling regulates neuroepithelial stem cell maintenance and neuroblast formation in Drosophila optic lobe development. Dev Biol, 2011, 350 (2) : 414–428 (in Chinese). |
[11] | Reichert H. Drosophila neural stem cells: cell cycle control of self-renewal,differentiation,and termination in brain development. Results Probl Cell Differ, 2011 : 529–546 (in Chinese). |
[12] | Sardiello M, Cairo S, Fontanella B, et al. Genomic analysis of the TRIM family reveals two groups of genes with distinct evolutionary properties. BMC Evol Biol, 2008, 8 (1) : 225 (in Chinese). |
[13] | Liu Y, Raheja R, Yeh N, et al. TRIM3,a tumor suppressor linked to regulation of p21Waf1/Cip1. Oncogene, 2014, 33 (3) : 308–315 (in Chinese). |
[14] | Boulay JL, Stiefel U, Taylor E, et al. Loss of heterozygosity of TRIM3 in malignant gliomas. BMC Cancer, 2009, 9 (1) : 71 (in Chinese). |
[15] | Chen G, Kong J, Tucker-Burden C, et al. Human Brat ortholog TRIM3 is a tumor suppressor that regulates asymmetric cell division in glioblastoma. Cancer Res, 2014, 74 (16) : 4536–4548 (in Chinese). |
[16] | Cheng DJ, Qian WL, Meng M, et al. Identification and expression profiling of the BTB domain-containing protein gene family in the silkworm,Bombyx mori. Int J Genomics, 2014 : 865065 (in Chinese). |
[17] |
Luo HX, Li M, Wang YJ. Refolding of inclusion body.
Biotechno Bull, 2007,
(5)
: 96–98
(in Chinese).
罗惠霞, 李敏, 王玉炯. 包涵体蛋白复性的几种方法. 生物技术通报,2007, (5) :96–98. |
[18] |
Zhejiang Agricultural University.
Sericultural Science.2nd Ed. Beijing: China Agriculture Press, 1981 : 55 -60(in Chinese).
浙江农业大学. 养蚕学.2版. 北京: 中国农业出版社, 1981 : 55 -60. |
[19] | Xie T, Spradling AC. Decapentaplegic is essential for the maintenance and division of germline stem cells in the Drosophila ovary. Cell, 1998, 94 (2) : 251–260 (in Chinese). |
[20] | Forbes A, Lehmann R. Nanos and Pumilio have critical roles in the development and function of Drosophila germline stem cells. Development, 1998, 125 (4) : 679–690 (in Chinese). |
[21] | Muraro N I, Weston AJ, Gerber AP, et al. Pumilio binds para mRNA and requires Nanos and Brat to regulate sodium current in Drosophila motoneurons. J Neurosci, 2008, 28 (9) : 2099–2109 (in Chinese). |
[22] | Li Y, Minor NT, Park JK, et al. Bam and Bgcn antagonize Nanos-dependent germ-line stem cell maintenance. Proc Natl Acad Sci U S A, 2009, 106 (23) : 9304–9309 (in Chinese). |
[23] | Harris E, Pargett M, Sutcliffe C, et al. Brat promotes stem cell differentiation via control of a bistable switch that restricts BMP signaling. Dev Cell, 2011, 20 (1) : 72–83 (in Chinese). |
[24] | Ohlstein B, Mckearin D. Ectopic expression of the Drosophila Bam protein eliminates oogenic germline stem cells. Development, 1997, 124 (18) : 3651–3662 (in Chinese). |
[25] | Beaulaton J. Hemocytes and hemocytopoiesis in silkworms. Biochimie, 1979, 61 (2) : 157–164 (in Chinese). |